СТЕРИЛИЗАЦИЯ ХИРУРГИЧЕСКИХ ИНСТРУМЕНТОВ — Med24info.com

Обработка всех инструментов включает в себя последовательное выполнение двух этапов: предстерилизационной обработки и непосредственно стерилизации. Вид и объем предстерилизационной обработки определяется степенью инфицированности инструментов, а способ стерилизации прежде всего зависит от вида инструментов.
а)              Предстерилизационная подготовка
Предстерилизационная подготовка складывается из обеззараживания, мытья и высушивания. Ей подвергаются все виды инструментов.
Вид и объем предстерилизационной обработки в недавнем прошлом определялся степенью инфицированности инструментов. Так, раньше существенно отличалась обработка инструментов после чистых операций (перевязок), гнойных операций, операций у больных, перенесших гепатит и в группе риска по СПИДу. Однако в настоящее время, учитывая высокую опасность распространения СПИДа, правила предстерилизационной подготовки ужесточены и приравнены к способам обработки инструментов, предусматривающим безусловную гарантию уничтожения вируса иммунодефицита человека. Следует отметить только, что инструменты после гнойных операций, операций у больных, перенесших в течение 5 последних лет гепатит, а также при риске СПИДа обрабатываются отдельно от других.
Все процедуры предстерилизационной обработки обязательно выполняются в перчатках!
Обеззараживание
Непосредственно после использования инструменты погружаются в емкость с дезинфицирующими средствами (накопитель). При этом они должны быть полностью погружены в раствор. В качестве дезинфицирующих

средств используется 3% раствор хлорамина (экспозиция 40-60 минут) или 6% раствор перекиси водорода (экспозиция 90 минут). После обеззараживания инструменты промываются проточной водой.
Мытье
Инструменты погружаются в специальный моющий (щелочной) раствор, в состав которого входит моющее средство (стиральный порошок), перекись водорода и вода. Температура раствора 50-60°С, экспозиция 20 минут. После этого инструменты моют щетками в том же растворе, а затем в проточной воде.

Высушивание
Высушивание может осуществляться естественным путем. В последнее время, особенно при последующей стерилизации горячим воздухом, инструменты сушат в сухожаровом шкафу при 80°С в течение 30 минут. После высушивания инструменты готовы к стерилизации.
Выбор метода стерилизации в первую очередь зависит от вида хирургических инструментов.
б)              Собственно стерилизация
Все хирургические инструменты по особенностям использованных материалов и других качеств можно условно разделить на три группы:

• металлические (режущие и нережущие),
• резиновые и пластмассовые,
• оптические (рис. 2.7).

ХИРУРГИЧЕСКИЕ ИНСТРУМЕНТЫ
т

шприцы, иглы, зажимы, пинцеты, крючки, зоиды, пластинки, винты, стержни и пр.

скальпели, ножницы, хирургические иглы, ампутационные ножи и пр.
катетеры, зонды, дренажи, наконечники для клизм и пр.
лапароскоп, гастроскоп, холедохоскоп, цистоскоп и пр.

Рис. 2.7
Основные виды хирургических инструментов

Стерилизация нережущих металлических инструментов
Основным методом стерилизации является стерилизация горячим воздухом в сухожаровом шкафу или в автоклаве при стандартных режимах. Возможно также использование кипячения. Однако инструменты после операций по поводу анаэробной инфекции и в группе риска по гепатиту кипятить не рекомендуется. Некоторые виды простых инструментов (пинцеты, зажимы, зонды и др.), предназначенные для одноразового использования, могут стерилизоваться лучевым способом.
Стерилизация режущих металлических инструментов
Проведение стерилизации режущих инструментов с помощью термических методов приводит к их затуплению и потере необходимых для хирурга свойств.

Основным методом стерилизации режущих инструментов является холодный химический способ с применением растворов антисептиков.
В последнее время в перевязочных режущие инструменты, как и нережущие, стерилизуются в сухожаровом шкафу, что приводит к некоторому снижению их остроты, но обеспечивает абсолютную стерильность.
Самыми лучшими способами стерилизации являются газовая стерилизация и особенно лучевая стерилизация в заводских условиях. Последний метод получил распространение при использовании одноразовых лезвий для скальпеля и хирургических игл (атравматический шовный материал).
Стерилизация резиновых и пластмассовых инструментов
Основным методом стерилизации резиновых изделий является авто- клавирование. При многократной стерилизации резина теряет свои эластические свойства, трескается, что является некоторым недостатком метода. Допустимо также кипячение резиновых изделий в течение 15 минут.
Пластмассовые изделия разового использования, а т^кже катетеры и зонды подвергаются лучевой заводской стерилизации.
Особо следует сказать о стерилизации перчаток. В последнее время наиболее часто используются одноразовые перчатки, подвергшиеся лучевой заводской стерилизации. При многократном использовании основным методом стерилизации является автоклавирование в щадящем режиме: после предстерилизационной обработки перчатки высушивают, пересыпают тальком (предупреждает слипание), заворачивают в марлю, укладывают в бикс и автоклавируют при 1,1 атм. в течение 30-40 минут или при

1. 5 атм. — 15-20 минут.

В экстренных случаях для стерилизации перчаток возможен следующий прием: хирург надевает перчатки и в течение 5 минут обрабатывает их тампоном, смоченным 96° этиловым спиртом.
После надевания стерильных перчаток обычно их обрабатывают шариком со спиртом для снятия с поверхности талька или других веществ, препятствовавших слипанию резины.

Стерилизация оптических инструментов
Основным методом стерилизации оптических инструментов, требующих наиболее щадящей обработки с исключением нагревания, является газовая стерилизация. Этим способом обрабатываются все инструменты для проведения лапароскопических и торакоскопических вмешательств, что связано с их сложным устройством и дороговизной.
При стерилизации фиброгастроскопов, холедохоскопов, колоноско- пов возможно применение и холодной стерилизации с использованием химических антисептиков (этиловый спирт, хлоргексидин, сайдекс — двухкомпонентный препарат на основе глутарового альдегида).
Следует особо отметить, что наилучшим способом профилактики контактной инфекции является использование одноразового инструментария, подвергшегося лучевой заводской стерилизации!

7.Профилактика контактной инфекции. Хирургические инструменты, их предстерилизационная обработка и стерилизация.

Стерилизация инструментов

1 Инструменты стерилизуются в автоклаве при 2 атм в течение 20 мину! при температуре 132,9° С.

2. В настоящее время широко используется сухожаровая стерилизация при температуре 180° С в течение 1 часа.

3. Применяется метод холодной стерилизации с помощью гамма-лучей.

4. В экстренных случаях иногда используют стерилизацию инструментов обжиганием. В металлический тазик или лоток наливают 15-20 мл спирта, инструменты укладывают на дно, а спирт поджигают.

5. Резиновые катетеры, дренажи стерилизуют в автоклаве при 1,1 атм (температура пара 120°С) в течение 45 минут или гамма-лучами.

6. Лапароскопические, эндоскопические инструменты стерилизуют в специальных герметично закрывающихся стерилизаторах, (пароформалиновых камерах) на дно которых кладут таблетки формальдегида (окись этилена). Стерилизация обеспечивается в течение 16 часов при температуре 18°С.

Современная обработка инструментов после чистых и гнойных операций

1, Инструменты после операции в разобранном виде погружаются в эмалированный таз с 1 % раствором инкрасепта-И (А) на 2-3 минуты.

2. Затем эти инструменты перекладываются во второй таз, который также

заполнен 1% раствором инкрасепта-И (А). Экспозиция 30 минут.

3. Через 30 минут эти инструменты во втором тазу обрабатываются щетками, ершами (по 1,5 минут на 1 инструмент).

4. Обработанные инструменты промываются под проточной водой 10 минут. 5. Затем ополаскивают дистиллированной водой 10 секунд, 6. Сушат в сухожаровом шкафу при температуре 80°-90° С. 7. Если инструменты были в контакте с анаэробной инфекцией, то их по­сле операции заливают в тазу 6% раствором пероксида водорода на 1 час, а затем обрабатывают инкрасептом-И (А) по вышеуказанной методике.

Контроль инструментов на скрытую кровь и моющий раствор

1Берут 3% раствор пероксида водорода и раствор азопирома 1:1, смешивают между собой, затем капают на инструмент. Если инструмент чистый, раствор станет бесцветный, если запачкан кровью — раствор синеет. Необходи­ма повторная обработка инструмента.

2.Бензидиновая проба на скрытую кровь. Берут 5-6 кристаллов бензидиона+2мл50% раствор уксусной кислоты+2мл 3% раствора пероксида водорода, и капают на инструмент. Если на инструментах имеется кровь, то р-р окрашивается в ярко-зеленый цвет (проба положительная).

3. Для выявления остатков моющего раствора на инструментах применяют 1%р-р фенолфталеина. Вымытые водой инструменты протирают ватой, смоч. 1% спиртовым раствором фенолфталеина. При наличии моющего ср-ва появляется розовое окрашивание.

Обработка поверхностей столов, тумбочек, стен и предметов ухода

1.Обработка поверхностей производится 1% раствором инкрасепта-П(Б) двукратно через 15 минут. Через 30 минут после обработки делается бакпосев на эфф-ность.

2.Применяется также дезавит-П. Концентрированный раствор разводят водой до 1%. Экспозиция 15 минут. Против вируса гепатита и ВИЧ применяет- 2%раствор с экспозицией 30 минут, против туберкулезной палочки 3% раствор с экспозицией 120 минут.

3. Дезавит-И используется также как и дезавит-П: 1% раствор с экспозицией 30 мин..

4. Если поверхности столов, тумбочек и т.д. находились в контакте с анаэробной инфекцией, они сперва обрабатываются 6% раствором пероксида водорода, затем моющим раствором (20 мл 33% раствора пероксида водорода пергидроль/ + 5,0 моющего средства («Лотос», «Прогресс» и т.п.) + 975 мл воды).

Перевязочный материал, его основные свойства. Основные требования, предъявляемые к перевязочному материалу. Подготовка перевязочного материала и белья к стерилизации и стерилизация их.

Требования, предъявляемые к перевязочному материалу:

• хорошая всасываемость(гигроскопичность),

• капиллярность,

• быстрое высыхание,

• возможность стерилизовать не ухудшая качество,

• эластичность,

• отсутствие раздражающих ткани свойств.

К перевязочным материалам относятся: вата, марля, лигнин, джут, гранулеза, холст, и др.

Стерилизация перчаток.

Стерилизация перчаток

Хирургические перчатки стерилизуют следующими способами:

1 Лучевая стерилизация на гамма установках. Доза 3,0 мегарад (мрад) или 30 килогрей (кгрей). Сроки стерильности 1 год, допускаются и больше.

2. Стерилизация в автоклавах при давлении 1,1 атм в течение 45 минут при температуре 120°С. Перед стерилизацией перчатки изнутри и снаружи пересы­паются тальком и каждую в отдельности завертывают в марлевую салфетку.

Перчатки перед стерилизацией и надеванием на руки хирурга проверяются на герметичность. Надев перчатки, их тщательно протирают спиртом.

Резиновые перчатки после однократного использования подлежат уничтоже­нию после дезинфекции их 3% раствором хлорамина или другими антисептиками.

Профилактика имплантационной инфекции. Стерилизация аллопластических, ксенопластических трансплантатов, небиологических материалов в пластической хирургии и травматологии.

Имплантационная инфекция вызывается вводимыми в ткани нестерильными чужеродными предметами: шовным материалом, протезами, металлическими конструкциями для остеосинтеза, лекарственными веществами. Дает наиболее грозные осложнения в виде нагноений, сепсисов, остеомиелитов, заражений больного сывороточным гепатитом. В связи с этим, главное направление профилактики основано на использовании одноразового инструментария и шприцов.

Аллопротезы: клапаны сердца, искусственные сосуды и суставы — применяют только одноразовые, стерилизованные в заводских условиях. Металлические конструкции для остеосинтеза, также применяют только однократно и, при последующем удалении, списывают. Повторно их использовать нельзя, т.к. в процессе ношения на них формируются биометаллические соединения, вызывающие развитие остеомиелита. Эти металлические конструкции поступают нестерильными, их подготовку и стерилизацию проводят как обычных инструментов. В операционной их перекладывают в лоток с 96% спиртом, в котором их хранят в течение рабочего дня. При заборе конструкций на инструментальный стол, возвращение их обратно в лоток недопустимо, т.к. на них могут быть следы крови предыдущего пациента.

Шприцы и иглы многоразового пользования применяют только в операционных и перевязочных, после использования их промывают проточной водой (иглы промывают шприцом или с помощью специальной промывной системы) и замачивают в разобранном виде в 6% растворе перекиси водорода с моющим средством — два часа. Вновь промывают проточной водой и подают сухими в ЦСО, где проводят полную обработку и стерилизацию по ГОСТу.

Шприцы и иглы одноразового пользования вскрывают только в присутствии больного (в детских ЛПУ- в присутствии матери или старшей медсестры). После использования их промывают проточной водой и на два часа замачивают в 3% хлорамине, после чего ополаскивают проточной водой и замачивают в дезрастворе.

Инфузии, внутривенные инъекции, забор крови на анализы проводят только с помощью одноразовых систем, игл, катетеров, которые стерилизуются в заводских условиях. После их использования, проводят промывание проточной водой и выбрасывают.

Шовный материал: рассасывающийся — кетгут, не рассасывающийся: капрон, лавсан и другие синтетические нити поступают в разовых упаковках, стерилизованные в заводских условиях. В качестве упаковок используются конверты или ампулы. Конверты с шовным материалом хранят в обычном шкафу, при необходимости вскрывают в нужном количестве — ножницами срезают верхнюю часть конверта и операционная сестра стерильным пинцетом достает внутреннюю упаковку с нитью. Ампулы хранят в автоклавированных банках с 96% спиртом, их достают по мере необходимости, заворачивают в салфетку и разбивают на столике. Спирт в банках меняют каждые 10 дней.

Операционные отделения могут готовить и собственный шовный материал, в основном, готовят: кетгут, хлопчатобумажные и синтетические нити. Изготовление материала производит только старшая медсестра или, под ее контролем, медсестры операционного отделения.

Кетгут: стандартные метровые нити сворачивают колечком, перевязывают; укладывают в автоклавированные широкогорлые банки с притертой крышкой и заливают водным раствором Люголя на 10 дней; затем, раствор меняют и выдерживают еще 10 дней; после чего, медсестра в стерильных условиях перекладывает его в стерильные банки с 96% спиртом. Через 10 дней производят забор нитей на бакпосев. Использовать начинают при отрицательном результате. Спирт в банках меняют каждые 10 дней, с забором шовного материала на бакисследование.

Хлопчатобумажные и синтетические нити: сматывают в «косички», стирают в 2% мыльно-содовом растворе до чистой воды; кипятят 20 мин в 2% растворе соды, ополаскивают проточной, а затем дистиллированной водой несколько раз, до отрицательной фенолфталеиновой пробы; сушат, укладывают в бикс и автоклавируют по обычной методике. После этого, в стерильных условиях, медсестра перекладывает нити в стерильные банки с 96% спиртом. Выдерживают 10 дней, производят забор на бакисследование, при отрицательном результате начинают применение. Спирт в банках меняют каждые 10 дней, с забором материала на бактериологическое исследование.

Банки с шовным материалом хранят в сейфе, крышки должны быть покрыты ватно-марлевым чехлом, выдают операционным сестрам под расписку. Забор шовного материала из банки производят в необходимом количестве на инструментальный столик, возвращать неиспользованный материал в банку запрещается, об этом медсестра и дает расписку. Его перекладывают в другие банки со спиртом и передают в перевязочные для наложения поверхностных швов.

Этапы обработки хирургических инструментов

Этапы обработки хирургических инструментов

1. Дезинфекция

2. Предстерилизационная очистка (ПСО)

3. Стерилизация

Дезинфекция хирургических инструментов (ХИ)

Проведение дезинфекции инструментов сразу после их использования направлено на профилактику профессионального инфицирования медицинского персонала и на профилактику внутрибольничного инфицирования пациентов.

В основном используются два метода дезинфекции изделий медицинского назначения (ИМН):

• физический

• химический

Предварительная очистка инструментов

При применении физических методов дезинфекции обязательно проводят предварительное удаление органических загрязнений (биологических жидкостей, слизь, гной и т.д.). Предварительная очистка применяется только в случаях, когда дезинфектант может фиксировать белковые загрязнения, что затрудняет процесс дезинфекции, например, после использования эндоскопической техники. Для этого применяют альдегидсодержащие «Глутарал», «Колдспор», «Сайдекс» или формалинсодержащие дезинфектанты.

Сразу же после применения инструмента его погружают в емкость с дезраствором таким образом, чтобы он покрывал все инструменты, сложные инструменты разбирают, замки раскрывают. Каналы и полости должны быть заполнены дезраствором так, чтобы в них не содержалось пузырьков воздуха.

Физический метод дезинфекции состоит в использовании физических факторов, в основном высоких температур и сухого и горячего воздуха (при 120 ^оС), насыщенный пар при избыточном давлении (1,5 атм.).

Химический метод дезинфекции является наиболее распространенным в ЛПУ. Сущность метода состоит в погружении в дез.раствор использованных инструментов. Дезинфекция проводится обязательно в емкостях с крышками. Емкости должны быть из легко обрабатываемых материалов и без повреждения — пластмассовые, эмалированные. По окончании дезинфекции все изделия тщательно промывают проточной водой, строго соблюдая время отмывки, рекомендуемое в методических указаниях на каждое дезинфицирующее средство. Если не указано время промывания, то после основной дезинфекции инструменты ополаскивают проточной водой 3-10 минут, дистиллированной водой – 0,5 минут.

 

Предстерилизационная обработка

Предстерилизационная обработка хир. инструментария — проводится после дезинфекции. Ее виды:

А. Ручная — выполняется в такой последовательности:

1. Ополаскивание под проточной водой — 0,5 минут.

2. Замачивание в моющем растворе при полном погружении изделия на 15 минут при температуре 50 ^оС. Используются средства, указанные для дезинфекции в смеси с раствором перекиси водорода. БИОЛОТ применяется без перекиси водорода.

3. Мойка в моющем растворе с помощью ерша или ватно-марлевого тампона – 0,5 минут.

4. Ополаскивание проточной водой после мойки «Прогрессом» — не менее 5 минут. Биолотом — 3 минуты. Астрой, Логосом, Айной — 10 минут.

Б. Механизированная мойка производится в специализированных моющих машинах по инструкции.

В. Ультразвуковая предстерилизационная очистка (УЗО) выполняется в специальной камере, заполненной моющим раствором, через которую пропускают ультразвук.

В настоящее время существует ряд средств, позволяющих дезинфекцию и предстерилизационную обработку инструментов объединить в один этап обработки.

Режимы обработки представлены в таблице №2.

 

Таблица 2. Дезинфекция и предстерилизационная очистка ХИ при совмещении в один этап.

Средство	Материал ХИ	Замачивание в моющем растворе	Время мойки	Ополаскивание	Примечание
Концентрация	Экспозиция (мин.)	Температура	Проточной водой	Дистиллированной водой
Аламинол	Металл, пластмасса, стекло. Резина			не менее 18	0,5     1,0	3,0     3,0	0,5     0,5	Срок годности рабочих растворов — 10 суток
Лизетол АФ	Металл, Стекло, резина, полимеры			не менее 18	0,5		0,5	Рабочие растворы стабильны 1 сутки
Септодор — Форте	Металл, резина, стекло	0,4		не менее 18	1,0	3,0	0,5	Срок годности — 10 суток
Септабик -Форте	Металл, стекло, пластмасса, Резина	1.0 1,0	60 120	не менее 18	1,0	3,0	0,5	Срок годности — 5 дней
Дюльбак	Стекло, пластмасса, резина, металл			не менее 18	0,5		0,5	Срок годности — 1 сутки
Виркон	Эндоскопы			не менее 18	0,5 — 1		0.5	0,5% — однократно. 1-2% — многократно 1 сутки
ЛОТОС, и др. моющие средства	Стекло, металл, резина, полимеры	1,5	1,5	Кипячение	0,5		0,5
Натрий двууглекислый	Стекло, металл, резина, полимеры	2,0		Кипячение	0,5		0,5
Пероксимед	Стекло, пластмасса, резина, металл коррозионностойкий				0,5		0,5	Срок хранения растворов — 5 суток

 

Контроль качества предстерилизационной обработки ХИ

А. На выявление остатков крови могут быть выполнены следующие пробы:

1. Бензидиновая -1 модификация: 0,5% и 1% р-р соляно-кислого бензидина в дистиллированной воде смешивают с равным количеством 3% перекиси водорода;

Бензидиновая -2 модификация: в смесь 5 мл 50% уксусной кислоты и 0,025 сернокислого бензидина добавляют 5 мл 3% перекиси водорода.

2. Амидопириновая: смешивают 2-3 мл 5% спиртового раствора амидопирина, и по 2-3 капли 30% уксусной кислоты и 3% перекиси водорода. 2-3 капли смеси из вышеперечисленных наносят на контролируемое изделие. При наличии остатков крови появляется сине-зеленое окрашивание.

Б. На выявление остатков моющих средств проводится фенолфталеиновая проба:

1-2 капли 1% раствора фенолфталеина наносят на изделие. Розовое окрашивание раствора говорит о наличии моющих средств.

Изделия, дающие положительную пробу на кровь или на моющие средства, обрабатываются повторно до получения отрицательного результата.

Стерилизация хирургического инструментария.

Стерилизация проводится только после дезинфекции, предстерилизационной обработки и высушивания инструментов. Применяют следующие способы.

1. Прокаливание — нагревание в сухом воздухе в специальных герметических камерах, которые называются «сухожаровые шкафы». Инструменты собирают, замки их замыкают. Если стерилизацию проводят непосредственно в операционном блоке рядом с операционной, то инструменты раскладывают в один слой на открытых лотках. Если после стерилизации инструменты необходимо транспортировать в другие помещения или хранить какое-то время, то их помещают или в крафт-пакеты, или в биксы, или другие плотные термоустойчивые емкости и герметизируют. Крафт-пакет представляет собой конверт из неокрашенной плотной бумаги, склеенный с помощью крахмального клея. Пакет может быть использован повторно, но не более 5 раз. Пакет не должен иметь ни механических повреждений, ни следов загрязнения биологическими жидкостями. Инструменты выдерживают 60 минут при температуре 180 ^оС, достают из шкафа только после остывания.

 

2. Автоклавирование (паровой) — нагревание в насыщенном водяном паре под повышенным давлением. Предварительно инструменты собирают, замки их замыкают, помещают или в биксы, или раскладывают на металлические решетки в один слой и потом упаковывают в двойную бязевую ткань, выдерживают 20 минут при температуре 132 ^оС. под давлением 2 атмосферы. Извлекают из автоклава только после снижения давления до нормального и неполного остывания.

 

3. Химический способ используется только для стерилизации эндоскопической операционной техники. Состоит из следующих этапов:

1) Отмыв с применением тканевых салфеток, а из каналов — путем подачи воды и воздуха.

2) Предварительная очистка специальными ферментными (энзимными) препаратами без совмещения с дез.средствами, способствующими фиксации белков, и тем самым вторичному загрязнению эндоскопов.

3) Промывание чистой водой, тщательное удаление воды и осушение каналов.

4) Погружение в растворы химических веществ, которые называют «Дезинфектанты» — созданные а основе альдегидов.

5) Отмывание эндоскопов от остатков дез.средств дистиллированной водой в течение 5-10 минут, осушение каналов.

6) Стерилизация проводится в емкостях с герметическими крышками в специально отведенных для этого помещениях, достаточно удаленных от места постоянного пребывания людей. При работе необходимо использовать средства защиты, так как большинство стерлянтов являются агрессивными по отношению к человеку, могут вызвать интоксикацию, отравление, аллергические реакции, даже повреждения слизистых и кожи. После стерилизации стерлянт удаляют с поверхностей инструментов дистиллированной водой методом погружения на 5 минут каждый раз последовательно в две емкости, после стерилизации и промывания инструменты или используют, или упаковывают в стерильные материалы или емкости для хранения и транспортировки.

Используют следующие стерлянты и режимы стерилизации:

• Перекись водорода 6% — 360 минут при 18 ^оС, 180 минут при температуре раствора 50 ^оС. После использования перекиси отмывание не производится.

• Сайдекс — в экспозиции 10 часов. Стерлянт может быть использован многократно — до 10 раз. Изделия, прошедшие стерилизацию таким способом, сохраняют стерильность 3 суток.

• Анолит (раствор гипохлорита натрия с кислотностью среды 1,6 – 2,6) — 30 минут. Раствор не вызывает аллергию, но токсичен при вдыхании его паров, вызывает коррозию металлического инструментария, агрессивен и для кожи. Он дешев, вырабатывается из водопроводной воды с добавлением хлористого натрия. Срок годности раствора — 2 дня, хотя сохраняет активность до 30 дней. Для стерилизации его можно использовать в исключительных случаях.

4. Промышленный способ — исполняется вне лечебно-профилактических учреждений, на специальном оборудовании, инструментов, собранных и упакованных как одноразовые изделия. Они проходят такую стерилизацию:

а) газовую (агентом стерилизующим является окись этилена, которая является очень взрывоопасной),

б) лучевую (агентом является ионизирующее излучение).

Хранение хирургического инструментария

После проведенной дезинфекции, предстерилизационной обработки, полного высушивания хирургические инструменты хранятся в собранном виде с замкнутыми замками в шкафах, поверхности которых подвергаются влажной обработке дезинфектантами, и эти шкафы не применяют для других целей. Ампутационные ножи хранятся в сейфе старшей медсестры операционного отделения.

Одноразовые изделия в стерильной упаковке с действующим сроком годности можно сохранять в коробках в сухом месте при комнатной температуре.

Инструменты, прошедшие стерилизацию хранятся только в «чистой зоне» операционной.

• в шторчатых биксах — не более 3 дней

• в микробиологических биксах — 20 дней

• в скрепленных крафт-пакетах — 3 дня

• в склеенных крафт-пакетах — 10 дней

• в бумажных пластиковых пакетах — 6 месяцев

• в бязевых мешках двойных со специальной пропиткой — 20 дней

• в обычных бязевых мешках — 3 дня

Режущий инструментарий, не подвергавшийся тепловой обработке, предназначенный для использования в любое время, хранят в прозрачных, хотя бы с одной стороны, герметически закрытых, химически инертных емкостях, заполненных этиловым спиртом 96%. Например, в лотке, закрытом сверху стеклянной пластиной. Слой над поверхностью инструментов должен быть не менее 2 см.

 

 

---

Дата добавления: 2015-07-12; просмотров: 10978 | Нарушение авторских прав

---

Читайте в этой же книге: Протокол №_______ | ОРГАНИЗАЦИОННО-МЕТОДИЧЕСКИЙ БЛОК | ИНФОРМАЦИОННЫЙ БЛОК | Основные принципы | Помощь врачу при наложении швов на кожу. | Тема 1.1. | Тема 1.2. | Занятие 1. | Терминологический диктант |

---

mybiblioteka.su — 2015-2020 год. (0.012 сек.)

2. Стерилизация хирургических инструментов и методы контроля.

Предстерилизационная обработка инструментов.

• Замачивание в моющем растворе (перекись+стиральный порошок+вода, а при анаэробной инфекции + 6% перекись водорода)

• Мытье под проточной водой 5 мин

• Мытье в моющем растворе

• Полоскание в дистиллированной воде

• Высушивание в раскрытом виде в сухожаровом шкафу при 85 градусах С

• Бензидиновая проба: отсутствие сине-зеленой окраски – показатель полного удаления крови с инструментов

Виды стерилизации

1. Сухожаровой шкаф

2. Автоклавирование

3. Обжигание

1. Стерилизация гамма- лучами

2. Стерилизация в парах антисептика

3. Замачиваниев антисептике

Стерилизация в сухожаровых шкафах

• Принцип- стерилизация горячим сухим воздухом

• Стерилизуются металлические инструменты

• Укладка на решетки в 1 слой

• Т =180 градусов, время = 1 час

• Хранение на стерильном столе- 6 часов

Стерилизация в автоклаве

• Принцип­стерилизация паром под давлением

• Давление необходимо для повышения температуры выше 100 градусов (закон Шарля)

• Стерилизуются белье, тампоны, салфетки, бинты, перчатки, катетеры

• Они укладываются в бикс Шиммельбуша по секторам

• Время стерилизации: 1.5 атм- 20 мин, 1.1 атм – 45 мин

• Хранение в биксе при закрытых решетках 48 часов

Стерилизация в парах антисептика

• Используется газовый стерилизатор

• Антисептик – формалинили окись этилена

• Экспозиция: 16 часов при 18 градусах или 6 часов при 55 градусах

Способы контроля за стерильностью

• Прямой метод – посев на флору (1 раз в 10 дней)

• Непрямой метод – в бикс или сухожаровой шкаф кладется ТВИ (термовременной индикатор), при Т выше 110 градусов он меняет окраску на коричневую, цвет индикатора сравнивается с эталоном

3. Флегмоны (признаки, разновидности, диагностика, лечение).

4.Продемонстрировать на фантоме ИВЛ методом «рот в нос» и закрытый массаж сердца.

Прежде чем начать эту процедуру, надо уложить постра­давшего на спину, чтобы

его воздухоносные пути были свободны для прохождения воздуха. Для этого его

голову максимально запрокинуть назад. Для этого подкладывают одну руку под

шею, а другой надавливают на те­мя. В результате корень языка отодвигается от

задней стенки гортани и восстанавливается проходимость дыхательных путей.

При сжатых челюстях надо выдвинуть ниж­нюю вперед и, надавливая на

подбородок, раскрыть рот, затем очистить салфеткой ротовую полость от слюны

или рвотных масс и приступить к искусственной вентиляции: на открытый рот

по­раженного положить в один слой салфетку (носовой платок), зажать ему нос,

сделать глубокий вдох, плотно прижать свои губы к губам пораженного, создав

герметичность, с силой вдуть воздух ему в рот. Вдувать надо такую

порцию воз­духа, чтобы она каждый раз вызывала возможно более полное

расправление легких, что обнаруживается по движению рудной клетки. Воздух вдувают ритмично 16—18 раз в минуту до восстановления естественного дыхания.

Если язык все же западает, его прошивают или прокалывают английской булавкой и фиксируют к воротнику одежды. С этой же целью можно также прибинтовать язык вместе с нижней челюстью к шее. Подготовив дыхательные пути пострадавшего, вдувают воз­дух в рот или нос каждые 5—6 секунд.

Непрямой массаж сердца проводится в сочетании с искус­ственной вентиляцией легких В этом случае помощь пораженному должны оказывать два или три человека. Первый производит непрямой массаж сердца, второй — искусственную вентиляцию легких способом «изо рта в рот», а третий поддержи­вает голову пораженного, находясь справа от него, и должен быть готов сменить одного из оказывающих помощь, чтобы искус­ственная вентиляция легких и непрямой массаж сердца осу­ществлялись непрерывно в течение нужного времени. Во время вдувания воздуха надавливать на грудную клетку нельзя. Эти мероприятия проводят попеременно: 4—5 надавливаний на груд­ную клетку (на выдохе), затем одно вдувание воздуха в легкие (вдох).

Техника. Непрямой массаж сердца, проводимый одним человеком. Пострадавшего укладывают на спину, запрокидывают ему голову. Платком или марлей очищают полость рта, делают 3—5 дыханий методом рот в рот, рот в нос. Располагаются слева от больного или опускаются на колени, если он лежит на полу (на земле). На нижнюю треть грудины кладут ладонь левой руки, а сверху нее — ладонь правой руки. Надавливают на грудину достаточно сильно, чтобы она опустилась приблизительно на 5 см, за тем задерживают на мгновение в этом положении и быстро отпускают. Цикл надавливание-—отпускание должен составлять несколько меньше секунды. Через каждые 15 циклов делают 2 частых дыхания методом рот в рот или рот в нос. Признаком эффекта массажа является сужение ранее расширенных зрачков, появление фибрилляции желудочков, а затем и редких сердечных сокращений, восстановление спонтанного дыхания. Массаж продолжают до полного восстановления сердечной деятельности, появления отчетливых сердцебиений и пульса на периферических артериях.

Билет 17

1. Подготовка рук хирурга и операционного поля. Новые средства для обработки рук и операционного поля.

• Фюрбрингера- предварительное мытье+сушка+сулема 1 мин+спирт 3 мин

• Альфельда- мытье+сушка+спирт 5 мин

• Спасокукоцкого- Кочергина 0.5% нашатырный спирт в 2 тазах 3мин+3 мин, затем – 96% спирт 5 мин

• Способ Бруна: спирт 10 мин

• Первомур (перекись водорода+муравьиная кислота) — 1 мин

• Спиртовый раствор хлоргексидина 2-3 мин

• Хибискраб 2-3 мин

• Пливасепт 2-3 мин

• Новосепт 2-3 мин

• Церигель – до высыхания пленки (около 1 мин)

Подготовка операционного поля

• Гигиеническая ванна

• Бритье волос

• Способ Гросиха- Филончикова: 5% р-р йода, белье и опять йод. Перед ушиванием раны и после ушивания — йод

• Способ Баккала- 1% спиртовый р-р бриллиантового зеленого

• Водные р-ры йода (йодонат, йодопирон)

Спиртовый хлоргексидин

Обработка и стерилизация инструментов для лапароскопии

В лапароскопической хирургии, как правило, используются сложные в своём устройстве и точно откалиброванные инструменты. Существенное различие между инструментами, используемыми в открытой хирургии, и инструментами, используемыми для лапароскопии, заключается в том, что последние более сложны по своей конструкции и зачастую весьма хрупкие.

Таким образом, лапароскопические инструменты являются более уязвимыми в плане застревания микроорганизмов и различного рода микрочастиц в щелях. Такого рода инструменты сложнее в очистке и хорошей стерилизации, по сравнению с инструментами для открытой хирургии. Более того, из-за их хрупкой конструкции необходимо использовать самые деликатные методы очистки в дополнение к основной стерилизации.

Чтобы сделать лапароскопические инструменты безопасными для пациента, доктора и обслуживающего персонала, необходима тщательная предстерилизационная очистка. Повышенная сложность лапароскопических процедур, а также появление резистентных штаммов бактерий, микобактерий, грибков и вирусов обусловливают необходимость эффективной очистки и дезинфекции и стерилизации инструментов. Стерилизация — это абсолютное разрушение или уничтожение форм микробной жизни. Её можно проводить паром, газом или химикатами. Дезинфекция — это относительное удаление патогенных организмов, за исключением спор. Обеззараживание может быть:

• Высокого уровня — уничтожаются все формы жизни, кроме спор;
• Промежуточного уровня — когда сохраняются некоторые грибы, вирусы и споры;
• Низкого уровня — когда грибы, вирусы, споры и микобактерии остаются неразрушенными.

Для лапароскопических инструментов, в идеале, следует использовать стерилизацию или дезинфекцию более высокого уровня.

ОЧИСТКА И СТЕРИЛИЗАЦИЯ инструментов для лапароскопии

Оптимальная обработка лапароскопических инструментов включает несколько ступеней, которые уменьшают риск передачи инфекции от использованных инструментов медицинскому персоналу.

1. Разборка лапароскопических инструментов. 
2. Дезинфекция лапароскопических инструментов. 
3. Предварительная чистка лапароскопических инструментов. 
4. Очистка и промывка лапароскопических инструментов. 
5. Сушка лапароскопических инструментов. 
6. Стерилизация лапароскопических инструментов. 
7. Хранение лапароскопических инструментов. 

Для качественной обработки необходимо выполнять все эти шаги в правильном порядке.

В большинстве крупных больниц имеется центральное отделение для стерилизации, куда инструменты доставляются для обработки. Правильная обработка инструментов является неотъемлемым аспектом ухода за ними, который значительно продлевает им срок службы, сокращая тем самым затраты на приобретение новых лапароскопических инструментов. 

Разберем подробнее каждый из этапов.

Разборка лапароскопических инструментов 

Разборные инструменты необходимо разобрать на части, чтобы их можно было легко обработать. Инструменты, которые не могут быть полностью разобраны, могут иметь остатки крови, микрочастиц тканей в отверстиях и в щелях, и ставят под угрозу безопасность пациентов, у которых они впоследствии используются.

Дезинфекция лапароскопических инструментов 

Это процедура, используемая для удаления физиологических частиц на многоразовых медицинских инструментах. Процедура начинается с того, что медсестра стирает влажной стерильной губкой видимые частицы тканей, крови и жидкостей с лапароскопического инструмента. После этого лапароскопические инструменты следует поместить в контейнер, содержащий дезинфицирующий раствор, например 0,5% хлора, и дать им полежать в нем в течение 10 минут. Инструменты не должны оставаться в этом растворе в течение длительного периода времени, поскольку они могут быть повреждены.

Как только инструменты проходят этот этап очистки, необходимо перейти к следующему этапу в цикле стерилизации. Использование стандартных процессов очистки способствует эффективному очищению жестких эндоскопических инструментов. Необходимо, чтобы раствор проник во все отверстия инструментов. В процессе ручной очистки особое внимание следует уделять сложным и деликатным механизмам, расположенным на дистальном конце многих инструментов. Допустимо использовать ультразвуковую чистку, чтобы вычистить труднодоступные места. По окончании обеззараживания инструмент должен быть безопасен для персонала без контакта с передаваемыми через кровь патогенными микроорганизамами.

Предварительная очистка лапароскопических инструментов 

После того, как лапароскопические инструменты проходят дезинфекцию, рекомендована дальнейшая обработка ферментативным методом. Для этих целей доступны многочисленные ферментативные продукты, а именно: протеаза, липаза, амилаза, которые эффективны в улучшении процесса очистки трудно моющихся инструментов. Они расщепляют кровь и другие белковые загрязнения и облегчают очистку. Эти ферменты являются белками, и должны быть удалены путём тщательной очистки.

Очистка лапароскопических инструментов 

Любая аппаратура и инструменты, которые имеют конструкцию, позволяющую проводить автоклавирование, требуют специализированной чистки как раз перед стерилизацией. Персонал ЛПУ должен убедиться, что нет остаточного белкового материала или органических остатков на поверхности инструмента. Это особенно важно, когда аппаратура или инструмент имеют составные части и щели; накопление остатков загрязнений в щелях может в конечном итоге привести к коррозийному повреждению и патогенной колонизации. Многие больницы применяют технику мытья инструментов в мыльных абразивных средствах. Хотя ручная очистка является частично эффективной, чистящие средства на основе ферментов и моющих средств, которые растворяют и выводят органический материал с поверхности инструментов, лучше подходят для того, чтобы некоторые поверхности инструмента могли быть очищены от крови вместе с другими жидкостями организма и белковым материалом до процесса стерилизации. Для лапароскопических инструментов лучше всего использовать мягкие щётки, которые позволяют тщательно очищать внутренние поверхности инструментов.

Лапароскопические инструменты лучше всего промывать в проточной воде, чтобы гарантированно очистить все твёрдые частицы с остатками химических веществ. Необходимо иметь «чистящие пистолеты» с тонкими заостренными насадками, чтобы вымыть грязь из лапароскопических инструментов. Струя воды способна очищать эти инструменты намного лучше, чем обычное промывание в воде в контейнере.

Популярным методом очистки является ультразвуковая очистка. Этот метод, безусловно, самый эффективный и действенный на сегодняшний день. Простота использования и превосходная эффективность делают ультразвуковую очистку предпочтительным выбором персонала ЛПУ. На самом деле, ультразвуковая чистка в 16 раз лучше, чем ручная чистка. Инструменты помещают в ультразвуковой блок на 10-15 минут и используют раствор с нейтральным pH. Во время ультразвуковой чистки следует обратить внимание на следующие моменты:

• Перед помещением в ультразвуковой блок инструменты очищаются от всех видимых загрязнений.
• Желательно не смешивать инструменты, сделанные из разнородных металлов (таких как алюминий и нержавеющая сталь) в одном цикле.
• Важно обеспечить достаточно места для инструментов. Ультразвуковой блок не должен быть перегружен.
• Как и при всех видах очистки, все инструменты должны быть разобраны.
• По завершении цикла инструменты немедленно вынимаются из блока и промываются.

Сушка лапароскопических инструментов 

Инструменты должны быть высушены в конце цикла очистки и полоскания перед упаковкой для стерилизации. Этого можно идеально достичь с помощью пневматического пистолета, который сдувает все капли воды с поверхностей инструментов, или с помощью специальной духовки.

Паровая стерилизация лапароскопических инструментов 

Стерилизация паром в автоклаве является одной из наиболее типичных форм стерилизации, используемых в медицинских учреждениях. Автоклавирование при 121°C в течение 15 минут идеально подходит для всех металлических инструментов многократного использования. Это эффективно, дешево и нетоксично. Лапароскопы можно стерилизовать мгновенной или вакуумной паровой стерилизацией.

Перед стерилизацией все инструменты, все силиконовые трубки и все виды кабелей должны быть покрыты тканью, чтобы предотвратить контакт с горячим металлическим контейнером. Затем их помещают в автоклав.

Флэш стерилизация проводится при 135°С в течение 60 минут. Этот процесс требует сухих циклов. Инструменты должны находиться на стойке стерилизатора в течение 45 минут, чтобы предотвратить конденсацию воды вокруг линзы.

 

Стерилизация газом лапароскопических инструментов 

Использование этиленоксида (ЭО) подойдет для всех одноразовых инструментов, лапароскопических инструментов и трубок с изоляцией, используемых для подачи газа, всасывания и орошения. Эндоскопические инструменты могут быть стерилизованы холодным или теплым газом, в соответствии с инструкциями изготовителя.

При холодном газе температуры устанавливаются на 85°C, инструменты также подвергаются обработке газом в течение 4 часов 30 минут. Аэрация должна последовать в течение 12 часов.

Стерилизация теплым газом происходит при 145°С в течение 2 часов 30 минут с последующей аэрацией в течение 8 часов.

Преимущества ЭО заключаются в том, что элементы инструментов не повреждаются, газ не вызывает коррозии оптики и проникает в пористый материал.

Его основными недостатками являются стоимость, токсичность, необходимость аэрации и длительность процесса.

Дезинфекция высокого уровня лапароскопических инструментов

Когда стерилизация недоступна или неосуществима, для обработки инструментов используется дезинфекция высокого уровня. Она уничтожает бактерии, вирусы, грибки и паразитов, но не может надёжно уничтожить все бактериальные эндоспоры, которые вызывают такие заболевания, как столбняк, газовая гангрена и атипичные микобактериальные инфекции. Такая стерилизация рекомендуется для инструментов, которые будут иметь контакт с поврежденной кожей или слизистыми оболочками.

Эффективность стерилизации зависит от количества и вида микроорганизмов, органических веществ (кровь, другие жидкости, ткани) и других веществ (например, грязи), присутствующих на инструменте. Поэтому важно обеззараживать и тщательно чистить инструменты перед ДВУ.

Агенты, которые используются для ДВУ, включают 2% глутаральдегид, 6% стабилизированную перекись водорода и уксусную кислоту (уксусная кислота / перекись водорода).

Глутаральдегид обладает преимуществами хорошей биоцидной активности, не вызывает коррозии оптики и активен в присутствии белка. Но следует помнить, что глутаральдегид раздражает кожу, глаза и дыхательную систему, особенно в концентрации 0,3 (ppm). Продолжительность использования коммерчески доступных растворов глутаральдегида варьируется, обычно, от 14 до 30 дней. Это должно проверяться ежедневно с тест-полоской производителя. Всегда придерживайтесь инструкций производителя относительно правильной температуры хранения и срока годности средств для ДВУ. Раствор следует заменять каждый раз, когда он становится мутным. На эффективность глутаральдегида влияют органическая нагрузка, время контакта и характер использования, концентрация, конфигурация инструментов, температура и pH. Фиброоптические световоды и оптики должны быть помещены в раствор 2% глутаральдегида не менее, чем на 10 минут. Выдержка не должна превышать двадцать минут. Оптика также может быть продезинфицирована 10-минутным погружением в 2% глутаральдегид. Необходимо следить за тем, чтобы конец штекера шнура находился вдали от раствора. В качестве альтернативы можно использовать стерильную салфетку поверх камеры и шнура. Погружение других металлических инструментов, включая троакары и инструменты, рекомендуется в течение часа, чтобы избежать заражения атипичной микобактериальной инфекцией.

Формальдегид, глутаральдегид из фенольных производных, йодофоры, гипохлориты, фенольные соединения и четвертичные аммониевые соединения непопулярны и были запрещены. Формальдегид потенциально вызывает рак и очень раздражает кожу, глаза, нос и дыхательные пути. Кроме того, его эффективность признана недостаточной, и по этой причине обычное использование формальдегида для стерилизации инструментов и других предметов не рекомендуется.

Новые методы стерилизации лапароскопических инструментов 

Для больниц с высокой рабочей нагрузкой важно быстрое время обработки инструментов, которые нельзя удовлетворительно стерилизовать паром или сухим жаром. Одна из новейших систем стерилизации — STERRAD (Johnson & Johnson) — использует пары перекиси водорода и низкотемпературную газовую плазму для быстрой стерилизации большинства устройств без токсичных остатков.

Обычно процесс занимает около 75 минут для упакованных и сухих инструментов и устройств. Внутри камеры создаётся глубокий вакуум. 59% водного пероксида испаряются в камеру. После диффузии газообразного пероксида с нагрузкой давление в камере снижается, что позволяет генерировать низкотемпературную газовую плазму. После завершения стерилизации инструменты остаются сухими, их можно сразу использовать или хранить стерильными. Таким образом, риск повторного загрязнения сведён к минимуму, и, учитывая, что лапароскопические инструменты остаются стерильными до их следующего использования, предотвращается повторная обработка инструментов, соответственно, экономятся деньги и время.

Эта система занимает минимальное пространство и не требует вентиляции или подключения воды. Единственное требование — это подключение к электросети.

Хранение лапароскопических инструментов 

Инструменты для лапароскопии следует использовать или правильно хранить вскоре после стерилизации или ДВУ, чтобы они не были загрязнены снова. Правильное хранение так же важно, как и надлежащая дезинфекция, очистка, стерилизация или ДВУ. Если инструменты не хранятся должным образом, все усилия и расходные материалы, использованные для их правильной обработки, будут потрачены впустую, и все будет загрязнено снова. Конкретные инструкции по правильному хранению зависят от того, будет ли по-прежнему выполняться стерилизация или ДВУ, от используемого метода, а также от того, упакованы ли инструменты. Срок хранения стерильно упакованного инструмента зависит от множества факторов, в том числе:

• Тип используемого упаковочного материала;
• Сколько раз инструменты обрабатываются;
• Количество людей, которые обрабатывают пакет;
• Чистота, влажность и температура в помещении для хранения;
• Хранятся ли упаковки на открытых или закрытых полках;
• Используются ли пылезащитные чехлы (например, закрытые пластиковые пакеты).

Для оптимального хранения стерильные упаковки помещаются в закрытые шкафы в местах, где умеренная температура, а также в условиях сухой или низкой влажности. При оптимальных условиях хранения и минимальной обработке правильно упакованные инструменты можно считать стерильными, если они остаются целыми и сухими. Время хранения и обращения со стерильными упаковками должно быть сведено к минимуму, поскольку вероятность загрязнения увеличивается со временем. Если вы сомневаетесь в стерильности упаковки, перед использованием её следует повторно стерилизовать.

---

---

Читайте также наши обзоры:

---

---

Купить любые лапароскопические инструменты легко в «Юни-тек»:

(812) 291-555-0

Этот адрес электронной почты защищён от спам-ботов. У вас должен быть включен JavaScript для просмотра.

Также занимается ремонтом и техническим обслуживанием оборудования для эндоскопии и эндовидеохирургии

7.Профилактика контактной инфекции. Хирургические инструменты, их предстерилизационная обработка и стерилизация.

Стерилизация инструментов

1 Инструменты стерилизуются в автоклаве при 2 атм в течение 20 мину! при температуре 132,9° С.

2. В настоящее время широко используется сухожаровая стерилизация при температуре 180° С в течение 1 часа.

3. Применяется метод холодной стерилизации с помощью гамма-лучей.

4. В экстренных случаях иногда используют стерилизацию инструментов обжиганием. В металлический тазик или лоток наливают 15-20 мл спирта, инструменты укладывают на дно, а спирт поджигают.

5. Резиновые катетеры, дренажи стерилизуют в автоклаве при 1,1 атм (температура пара 120°С) в течение 45 минут или гамма-лучами.

6. Лапароскопические, эндоскопические инструменты стерилизуют в специальных герметично закрывающихся стерилизаторах, (пароформалиновых камерах) на дно которых кладут таблетки формальдегида (окись этилена). Стерилизация обеспечивается в течение 16 часов при температуре 18°С.

Современная обработка инструментов после чистых и гнойных операций

1, Инструменты после операции в разобранном виде погружаются в эмалированный таз с 1 % раствором инкрасепта-И (А) на 2-3 минуты.

2. Затем эти инструменты перекладываются во второй таз, который также

заполнен 1% раствором инкрасепта-И (А). Экспозиция 30 минут.

3. Через 30 минут эти инструменты во втором тазу обрабатываются щетками, ершами (по 1,5 минут на 1 инструмент).

4. Обработанные инструменты промываются под проточной водой 10 минут. 5. Затем ополаскивают дистиллированной водой 10 секунд, 6. Сушат в сухожаровом шкафу при температуре 80°-90° С. 7. Если инструменты были в контакте с анаэробной инфекцией, то их по­сле операции заливают в тазу 6% раствором пероксида водорода на 1 час, а затем обрабатывают инкрасептом-И (А) по вышеуказанной методике.

Контроль инструментов на скрытую кровь и моющий раствор

1 Берут 3% раствор пероксида водорода и раствор азопирома 1:1, смешивают между собой, затем капают на инструмент. Если инструмент чистый, раствор станет бесцветный, если запачкан кровью — раствор синеет. Необходи­ма повторная обработка инструмента.

2.Бензидиновая проба на скрытую кровь. Берут 5-6 кристаллов бензидиона+2мл50% раствор уксусной кислоты+2мл 3% раствора пероксида водорода, и капают на инструмент. Если на инструментах имеется кровь, то р-р окрашивается в ярко-зеленый цвет (проба положительная).

3. Для выявления остатков моющего раствора на инструментах применяют 1%р-р фенолфталеина. Вымытые водой инструменты протирают ватой, смоч. 1% спиртовым раствором фенолфталеина. При наличии моющего ср-ва появляется розовое окрашивание.

Обработка поверхностей столов, тумбочек, стен и предметов ухода

1.Обработка поверхностей производится 1% раствором инкрасепта-П(Б) двукратно через 15 минут. Через 30 минут после обработки делается бакпосев на эфф-ность.

2.Применяется также дезавит-П. Концентрированный раствор разводят водой до 1%. Экспозиция 15 минут. Против вируса гепатита и ВИЧ применяет- 2%раствор с экспозицией 30 минут, против туберкулезной палочки 3% раствор с экспозицией 120 минут.

3. Дезавит-И используется также как и дезавит-П: 1% раствор с экспозицией 30 мин..

4. Если поверхности столов, тумбочек и т.д. находились в контакте с анаэробной инфекцией, они сперва обрабатываются 6% раствором пероксида водорода, затем моющим раствором (20 мл 33% раствора пероксида водорода пергидроль/ + 5,0 моющего средства («Лотос», «Прогресс» и т.п.) + 975 мл воды).

Перевязочный материал, его основные свойства. Основные требования, предъявляемые к перевязочному материалу. Подготовка перевязочного материала и белья к стерилизации и стерилизация их.

Требования, предъявляемые к перевязочному материалу:

• хорошая всасываемость(гигроскопичность),

• капиллярность,

• быстрое высыхание,

• возможность стерилизовать не ухудшая качество,

• эластичность,

• отсутствие раздражающих ткани свойств.

К перевязочным материалам относятся: вата, марля, лигнин, джут, гранулеза, холст, и др.

Стерилизация перчаток.

Стерилизация перчаток

Хирургические перчатки стерилизуют следующими способами:

1 Лучевая стерилизация на гамма установках. Доза 3,0 мегарад (мрад) или 30 килогрей (кгрей). Сроки стерильности 1 год, допускаются и больше.

2. Стерилизация в автоклавах при давлении 1,1 атм в течение 45 минут при температуре 120°С. Перед стерилизацией перчатки изнутри и снаружи пересы­паются тальком и каждую в отдельности завертывают в марлевую салфетку.

Перчатки перед стерилизацией и надеванием на руки хирурга проверяются на герметичность. Надев перчатки, их тщательно протирают спиртом.

Резиновые перчатки после однократного использования подлежат уничтоже­нию после дезинфекции их 3% раствором хлорамина или другими антисептиками.

Профилактика имплантационной инфекции. Стерилизация аллопластических, ксенопластических трансплантатов, небиологических материалов в пластической хирургии и травматологии.

Имплантационная инфекция вызывается вводимыми в ткани нестерильными чужеродными предметами: шовным материалом, протезами, металлическими конструкциями для остеосинтеза, лекарственными веществами. Дает наиболее грозные осложнения в виде нагноений, сепсисов, остеомиелитов, заражений больного сывороточным гепатитом. В связи с этим, главное направление профилактики основано на использовании одноразового инструментария и шприцов.

Аллопротезы: клапаны сердца, искусственные сосуды и суставы — применяют только одноразовые, стерилизованные в заводских условиях. Металлические конструкции для остеосинтеза, также применяют только однократно и, при последующем удалении, списывают. Повторно их использовать нельзя, т.к. в процессе ношения на них формируются биометаллические соединения, вызывающие развитие остеомиелита. Эти металлические конструкции поступают нестерильными, их подготовку и стерилизацию проводят как обычных инструментов. В операционной их перекладывают в лоток с 96% спиртом, в котором их хранят в течение рабочего дня. При заборе конструкций на инструментальный стол, возвращение их обратно в лоток недопустимо, т.к. на них могут быть следы крови предыдущего пациента.

Шприцы и иглы многоразового пользования применяют только в операционных и перевязочных, после использования их промывают проточной водой (иглы промывают шприцом или с помощью специальной промывной системы) и замачивают в разобранном виде в 6% растворе перекиси водорода с моющим средством — два часа. Вновь промывают проточной водой и подают сухими в ЦСО, где проводят полную обработку и стерилизацию по ГОСТу.

Шприцы и иглы одноразового пользования вскрывают только в присутствии больного (в детских ЛПУ- в присутствии матери или старшей медсестры). После использования их промывают проточной водой и на два часа замачивают в 3% хлорамине, после чего ополаскивают проточной водой и замачивают в дезрастворе.

Инфузии, внутривенные инъекции, забор крови на анализы проводят только с помощью одноразовых систем, игл, катетеров, которые стерилизуются в заводских условиях. После их использования, проводят промывание проточной водой и выбрасывают.

Шовный материал: рассасывающийся — кетгут, не рассасывающийся: капрон, лавсан и другие синтетические нити поступают в разовых упаковках, стерилизованные в заводских условиях. В качестве упаковок используются конверты или ампулы. Конверты с шовным материалом хранят в обычном шкафу, при необходимости вскрывают в нужном количестве — ножницами срезают верхнюю часть конверта и операционная сестра стерильным пинцетом достает внутреннюю упаковку с нитью. Ампулы хранят в автоклавированных банках с 96% спиртом, их достают по мере необходимости, заворачивают в салфетку и разбивают на столике. Спирт в банках меняют каждые 10 дней.

Операционные отделения могут готовить и собственный шовный материал, в основном, готовят: кетгут, хлопчатобумажные и синтетические нити. Изготовление материала производит только старшая медсестра или, под ее контролем, медсестры операционного отделения.

Кетгут: стандартные метровые нити сворачивают колечком, перевязывают; укладывают в автоклавированные широкогорлые банки с притертой крышкой и заливают водным раствором Люголя на 10 дней; затем, раствор меняют и выдерживают еще 10 дней; после чего, медсестра в стерильных условиях перекладывает его в стерильные банки с 96% спиртом. Через 10 дней производят забор нитей на бакпосев. Использовать начинают при отрицательном результате. Спирт в банках меняют каждые 10 дней, с забором шовного материала на бакисследование.

Хлопчатобумажные и синтетические нити: сматывают в «косички», стирают в 2% мыльно-содовом растворе до чистой воды; кипятят 20 мин в 2% растворе соды, ополаскивают проточной, а затем дистиллированной водой несколько раз, до отрицательной фенолфталеиновой пробы; сушат, укладывают в бикс и автоклавируют по обычной методике. После этого, в стерильных условиях, медсестра перекладывает нити в стерильные банки с 96% спиртом. Выдерживают 10 дней, производят забор на бакисследование, при отрицательном результате начинают применение. Спирт в банках меняют каждые 10 дней, с забором материала на бактериологическое исследование.

Банки с шовным материалом хранят в сейфе, крышки должны быть покрыты ватно-марлевым чехлом, выдают операционным сестрам под расписку. Забор шовного материала из банки производят в необходимом количестве на инструментальный столик, возвращать неиспользованный материал в банку запрещается, об этом медсестра и дает расписку. Его перекладывают в другие банки со спиртом и передают в перевязочные для наложения поверхностных швов.

руководство по очистке и дезинфекции — блог компании Аврорамед

Очистка и дезинфекция хирургических инструментов

Запросить КП Консультация

Наиболее распространенными являются физический (обработка сухим горячим воздухом или перегретым паром) и химический (погружение в дезинфицирующие растворы) методы дезинфекции. Химическая дезинфекция и предстерилизационная очистка, как правило, объединяются в один этап обработки. Среди методов различают: ручную, машинную и ультразвуковую очистку.

Ручная дезинфекционная очистка

При проведении механической (ручной) мойки хирургических инструментов рекомендуется придерживаться следующих правил:

1. Все процедуры дезинфекции и обработки проводятся медперсоналом обязательно в перчатках достаточной толщины, халатах, масках, водонепроницаемых фартуках, защитных очках, с острыми предметами обращаются осторожно.
2. При приготовлении растворов следует соблюдать указания изготовителя по концентрации, температуре и времени воздействия.
3. В случае применения порошковых средств в рабочем растворе — следить за полным их растворением.
4. Использовать мягкие салфетки без ворса, пластиковые щетки или моющие пистолеты. Не применять: металлические щетки, крупнозернистые абразивные вещества, чрезмерное надавливание.
5. Инструменты укладывать аккуратно, не допуская переполнения лотков.
6. После ручной дезинфицирующей очистки хирургические инструменты промывают проточной дистиллированной водой от 3 до 10 мин (в зависимости от применяемого средства), удаляя остатки загрязнений, и высушивают.

Машинная очистка и дезинфекция

Механизированная мойка производится в специализированных моющих машинах, где максимально обеспечивается стандартизация процессов очистки и дезинфекции. Перед загрузкой в машину инструменты предварительно обрабатываются вручную или в ультразвуковой ванне и тщательно промываются с удалением загрязняющих остатков. При машинной обработке используются термические и химико-термические методы дезинфекции. Внимательное изучение инструкций по эксплуатации моющих машин и рекомендаций изготовителей хирургических инструментов, позволяют избежать некачественной обработки и порчи инструментария.

Ультразвуковая очистка

Эффективным механическим методом, дополняющим ручную обработку ХИ из нержавеющей стали и твердого пластика, является ультразвуковая очистка. Ультразвуковая предстерилизационная очистка (УЗО) выполняется в специальной камере, заполненной моющим раствором, через которую пропускают ультразвук. Используется для:

• удаления приставших загрязнений;
• ускоренной дезинфекции и одновременной интенсивной очистки.

Правила, которые следует учитывать хирургической медсестре при ультразвуковой мойке инструментов, сходны с правилами ручной очистки и дезинфекции.

Особенности обработки отдельных групп инструментов

Некоторые группы хирургических инструментов требуют выполнения специальных правил обработки.

Группы инструментов	Ручная	Машинная	Ультразвуковая
Микрохирургические	Ручная Требуется очень бережное обращение	МашиннаяТщательно закреплять, применяя специальные держатели	УльтразвуковаяЗакреплять в специальных держателях
Стоматологические	РучнаяПредварительно очищать от присохших остатков, проверять совместимость с моющими средствами	МашиннаяТщательно закреплять, применяя специальные держатели, сверла, фрезы и шлифовальные головки дополнительно обрабатывать ультразвуком	УльтразвуковаяХим ср-ва использовать в соответствии с рекомендациями изготовителя
Механические устройства	РучнаяНе погружать в моечную ванну, не допускать проникновения воды в соединительные муфты и детали	МашиннаяОбрабатываются только съемные части при разрешении изготовителя	УльтразвуковаяОбработке не подлежат
Эндоскопы и малоинвазивные	РучнаяПолости и каналы промывать специальными щетками по всей длине	МашиннаяПредварительно разобрать, вынуть уплотнители, открыть или снять краны, закрепить	УльтразвуковаяОбрабатываются только рекомендованные изготовителем
Гибкие эндоскопы	РучнаяПеред обработкой снять клапаны и колпачки, после обработки- более длительно промывать и сушить слегка теплым воздухом	МашиннаяТолько в специальных аппаратах	УльтразвуковаяОбработке не подлежат

Заключительная дезинфекция

После очистки, дезинфекции и высушивания инструментов проводится стерилизация — обезвреживание оставшихся микроорганизмов. Основной способ стерилизации — автоклавирование. Он применяется, в основном, к хирургическим инструментам из нержавеющей стали. Инструменты, которые не могут подвергаться обычной стерилизации или стерилизация которых не требуется, подлежат заключительной дезинфекции. При ручном способе используется химический метод, при машинном — химический и химико-термический с промежуточной очисткой. После проведения процедуры инструменты должны быть тщательно промыты деминерализованной стерильной водой и высушены. Заключительной дезинфекции, как правило, подвергаются: гибкие эндоскопы, эластичные инструменты из пластмассы, резины, латекса.