6. Предстерилизационная обработка инструментов.

Цель: тщательная механическая очистка инструментов, шприцев, игл и так далее.

Предстерилизационная обработка инструментов:

1 этап – дезинфекция — замачивание в 3% растворе хлорамина 45 мин при t=60

2 этап – предстерилизационная очистка (замачивание в моющем растворе 45 мин. С перекисью водорода 3%, затем щеткой обрабатывают инструменты в том же растворе, затем в течение 5 мин ополаскивают теплой водой и 1 мин в дистиллированное воде)

Если инструменты после операции, проведенной у больного с анаэробной инфекцией – после всех процедур еще кипятят 90 мин. Через сутки – стерилизация.

Предстерилизационная подготовка хирургических инструментов, бывших в употреблении, осуществляется следующим образом:

1. Бывшие в употреблении, но не инфицированные инструменты моют проточной водой щетками в течение 5 минут, затем замачивают в растворе А (пергидроль — 20,0, ПАВ «Астра» — 5,0; вода — 975 мл.) при 50 0С – на 15-20 минут.

2. Инструменты, загрязненные гноем или кишечным содержимым, помещают в 5% раствор лизола на 30 минут.

3. Инструменты и шприцы после операции у больного с анаэробной инфекцией замачивают в 6 % растворе перекиси водорода + 0,5 % раствор ПАВ «Астра» на 1 час, затем кипятят 90 минут.

В настоящее время с целью профилактики ВИЧ-инфекции все инструменты после использования перед прохождением обычной предстерилизационной подготовки должны быть замочены в 3% р-ре хлорамина в течение 60 минут или в 6% р-ре перекиси водорода в течение 90 минут

Стерилизация нережущих металлических инструментов осуществляется с помощью: 1. Стерилизации в сухожаровом шкафу при t — 180-200 0 C в течение 60 минут.

2. Автоклавирования при давлении в 2 Атм (132,9 град. С.) в течение 20 минут.

3. Кипячения в дистиллированной воде с добавлением натрия гидрокарбоната (20 гр. на 1 литр воды) – 45 минут.

Инструменты после операций по поводу анаэробной инфекции и в группе риска по гепатиту или ВИЧ-инфекции кипятить нельзя.

Режущие и колющие инструменты кипятят в течение 3-х минут без добавления гидрокарбоната натрия, затем погружают в 96 % этанол на 2 — 3 часа.

Кипячение шприцов осуществляется в разобранном виде в бидистиллированной воде в течение 45 минут. Стеклянная часть шприца при этом обертывается марлей.

Инструментарий, используемый во время операции, рекомендуется стерилизовать в сухожаровых шкафах при температуре 180 0С в течение 1 часа.

В таких же условиях должны стерилизоваться и режущие инструменты, что приводит к некоторому снижению их остроты, но обеспечивает абсолютную стерильность. Эти изменения в организации стерилизации связаны с частой высеваемостью патогенной флоры после вышеописанных традиционных способов стерилизации.

Одноразовые инструменты (пинцеты, зажимы, зонды, скальпели) стерилизуются с помощью ионизирующего излучения в заводских условиях.

7. Сухожаровый шкаф

Принцип работы устройства основан на циркуляции горячего воздуха внутри камеры из нержавеющей стали или другого термостойкого материала. Стерилизующим агентом в данном случае является сухое тепло, обладающее превосходными проникающими свойствами практически для любых материалов. Сухожаровой шкаф представляет собой электрический шкаф круглой или прямоугольной формы. Стерилизационная камера имеет сетки или лотки для размещения подвергаемых стерилизации предметов, термометр и специальное устройство для смешивания сухого и нагретого воздуха во время стерилизации. Нужную температуру устанавливают и поддерживают с помощью термоэлектрического реле.

Сначала укладывают на полки предметы, при открытой дверце доводят tдо 80-85 ,чтобы убрать всю влагу из шкафа и с инструментов. Затем дверцу закрывают,tдоводят до 180, стерилизуют в течение 60 мин, затем отключают, когдаtснизится до 75-50, открывают и стерильным инструментом закрывают крышку металлической коробки с инструментами, через 15-20 мин разгружают шкаф.

Плюс: исключается коррозия металлов, дешевле автоклавов

Недостатки: более высокие t, поэтому нельзя стреилизовать резину текстиль и другое.

Стерилизация в автоклаве и сухожаровом шкафу в настоящее время стала главным, наиболее надёжным способом стерилизации хи- рургических инструментов.

В современных стационарах обычно выделяют специальные центральные стерилизационные отделения, где с помощью этих двух методов стерилизуют наиболее простые и часто используемые предметы и инструменты всех отделений больницы (шприцы, иглы, простые хирургические наборы, зонды, катетеры и пр.)

Дезинфекция, предстерилизационная очистка, стерилизация изделий медицинского назначения

Дезинфекция и стерилизация изделий медицинского назначения проводится для обезвреживания либо уничтожения различных микроорганизмов. Но некоторые руководители лечебных учреждений, стремясь сэкономить, относятся к этим мероприятиям недостаточно ответственно. В результате значительно возрастает риск развития различных инфекционных заболеваний, в том числе и гнойно-септических, как среди больных, так и сотрудников ЛПУ. Поэтому очень важно

правильно обеззараживать медицинские изделия.  Качество дезинфекции можно оценить с помощью смывов на определение золотистого стафилококка, синегнойной палочки и бактерий группы кишечной палочки. Контролируют 1 % одновременно обработанных изделий, но не менее трех инструментов. Дезинфекция считается эффективной при отсутствии роста микроорганизмов.

Обработка медицинских инструментов включает в себя дезинфекцию, предстерилизационную очистку и собственно стерилизацию. Общие правила организации указанных процессов установлены «Методическими указаниями по дезинфекции, предстерилизационной очистке и стерилизации изделий медицинского назначения» (МУ-287-113). Их утвердил Департамент Госсанэпиднадзора Минздрава РФ 30.12.1998 г. Кроме того, применяются утвержденные НИИ дезинфектологии Роспотребнадзора методические пособия по применению конкретных дезинфицирующих средств.

Познакомимся сначала с дезинфекцией, которая является достаточно сложной, объемной и универсальной для различных ЛПУ.

Что такое дезинфекция

Этот термин обозначает уничтожение патогенных и условно-патогенных микроорганизмов на всех поверхностях в помещениях, в том числе на полу, стенах, ручках дверей, выключателях, подоконниках, а также на жесткой мебели, поверхностях врачебного оборудования, в воздухе помещений, на посуде, белье, изделиях медицинского назначения и предметах ухода за больными, санитарно-техническом оборудовании, биологических жидкостях. Словом, дезинфекцию должны проходить все инструменты и расходные материалы, которые используются в работе любого ЛПУ.

Задачей дезинфекции является предупреждение или ликвидация накопления, размножения и распространения  возбудителей заболеваний. И в первую очередь, если мы говорим о больницах,  внутрибольничных инфекций. Дезинфекция может быть профилактической и очаговой.

Профилактическая дезинфекция проводится для защиты людей от возможного заражения. В лечебных учреждениях она выполняется в виде текущей ежедневной влажной уборки и генеральной уборки эпидзначимых кабинетов (операционных, перевязочных) один раз в неделю. Очаговая дезинфекция проводится в случае возникновения или подозрения на возникновение инфекционного заболевания.

Препарат для проведения дезинфекции и его концентрация выбираются исходя из конкретного инфекционного заболевания. В зависимости от вида медицинского изделия проводят дезинфекцию высокого (ДВУ), промежуточного (ДПУ) и низкого уровней (ДНУ).

А теперь условно разделим обрабатываемые предметы на несколько видов. «Некритические» контактируют с неповрежденной кожей. «Полукритические» контактируют со слизистыми оболочками или поврежденной кожей. «Критические» проникают в стерильные ткани организма или сосуды, контактируют с кровью или инъекционными растворами.

ДВУ используется для обработки «критических» предметов. При этом методе обработки погибают все микроорганизмы, кроме спор бактерий. Для ДВУ применяют глутаровый альдегид, диоксид хлора, 6 % раствор перекиси водорода и средства на основе надуксусной кислоты. Эти химические средства можно использовать и для стерилизации. Однако при стерилизации данными веществами время обработки значительно увеличивается.

ДПУ используется для обработки «полукритических предметов. При проведении ДПУ погибают вегетативные формы бактерий, в том числе микобактерии, большинство вирусов и грибов. Однако споры бактерий в этих условиях выживают. Мелкие нелипидные вирусы, например энтеровирусы, риновирусы, более устойчивы к бактерицидным средствам. Крупные же липидные вирусы, такие как аденовирусы, вирус гепатита В и ВИЧ, обычно погибают при обработке дезинфектантами промежуточного уровня. К дезинфекционным средствам, используемым для ДПУ, относятся практически все препараты, концентрация которых готовится по режиму уничтожения бактерий и в соответствии с методическими указаниями к каждому используемому препарату.

ДНУ используется для обработки «некритических» и некоторых «полукритических» предметов. Например, для обработки ванн, которые применяют при гидротерапии пациентов с поврежденной кожей. После ДНУ погибают вегетативные формы большинства видов бактерий, вирусы и грибы. Не реагируют на этот метод обработки споры бактерий, микобактерии и мелкие нелипидные вирусы. К средствам ДНУ относятся соединения на основе 70 % и 90 % этилового или изопропилового спирта, хлорсодержащие препараты, некоторые фенолсодержащие средства и йодофоры. Среди дезинфектантов низкого уровня также можно назвать препараты на основе четвертичных аммониевых соединений.

Применяются 4 основных метода дезинфекции:

Механический метод – это проветривание, вентиляция помещений, стирка белья, обработка поверхностей пылесосом, протирание их влажной ветошью.

Физический метод заключается в высокотемпературной обработке Используются кипячение в дистиллированной воде или воде с добавлением натрия двууглекислого (питьевая сода), паровой метод в стерилизаторе (автоклаве), воздушный метод в суховоздушном шкафу. Этот метод надежен, экологически чист и безопасен для персонала.

Химический метод позволяет обрабатывать медицинские предметы различными химическими веществами в жидком, газообразном состоянии. Изделия погружают в дезраствор, налитый в пластмассовые, стеклянные или покрытые эмалью без повреждений емкости. Для проведения такой дезинфекции рекомендуется применять специальные контейнеры, в которых изделия размещаются на перфорированных решетках. Это снижает риск инфицирования и травматизации персонала. Емкости с растворами дезинфицирующих средств должны быть снабжены крышками, иметь надписи с указанием названия средства, его концентрации, срока приготовления и использования.

Биологический метод основан на использовании антагонизма различных видов микроорганизмов. Так, при использовании бактериофагов, то есть вирусов бактерий, уничтожаются стафилококки, синегнойная палочка, брюшнотифозные бактерии и т. д.

К сведению. Бактериофаги узко специфичны. Например, стафилококковый бактериофаг, проникая в микробную клетку стафилококка, уничтожает только ее. Для обработки медицинских изделий их не применяют, но зато их можно достаточно эффективно использовать для лечения людей и для обеззараживания поверхностей, особенно там, где сформировался госпитальный штамм (например, роддома). Также бактериофаги хорошо знакомы работникам предприятий коммунальной сферы. Их используют для обеззараживания сточных вод на полях фильтрации.

Средства химической дезинфекции

Средства химической дезинфекции наиболее часто используется в ЛПУ. Большинство таких средств по химическому составу можно разделить на 7 групп.

В состав галогенсодержащих веществ входят в качестве активного действующего вещества хлор, бром, йод. Препаратами из этой группы являются, в частности, Хлорамин Б, Хлорэффект, гипохлорид натрия, Де-хлор, нейтральный анолит, Сульфохлорантин, Пресепт, хлоргексидин глюконат и т.д. 

В кислородсодержащей группе препаратов действующим веществом является кислород, выделяющийся из перекиси водорода, перекисных соединений, надкислот. Препаратами этой группы являются, например, перекись водорода, Оксидезин, Пероксимед, Окадез, Клиндезин  Окси, Виркон.

Средства на основе катионных поверхностно-активных веществ (ПАВы) представляются весьма перспективными, так как позволют совмещать дезинфекцию и предстерилизационную обработку. ПАВы не вызывают коррозию медицинских инструментов. К препаратам из этой группы относятся АХД 2000 специаль, Аламинол и Аламинол плюс, Бриллиант, Велтолен, Ника-дез, Премьер, Самаровка, Септодор форте, Вегосепт.

Гуанидсодержащие средства созданы на основе сложных органических соединений. Они активны в отношении широкого спектра микроорганизмов. Препаратами этой группы являются Лизоформин специаль, Лизетол АФ (при его использовании металлические инструменты полностью очищаются, причем без коррозии), Пливасепт 5%, хлоргексидин биглюконат (Гибитан), Фогуцид, который на обработанной поверхности образует защитную пленку, действующую от 3 до 7 суток.

В состав альдегидсодержащих средств входят глутаровый или янтарный альдегид. Препараты этой группы обладают выраженным бактерицидным, вирулоцидным, фунгицидным, спороцидным действием. Вместе с тем они отрицательно действуют на макроорганизмы. Часть этих дезсредств может использоваться не только для дезинфекции, но и для стерилизации инструментария, а также для проведения дезинфекции эндоскопического оборудования по  режиму ДВУ. Из этой группы чаще всего используются Гигасепт ФФ, Сайдекс, Лизоформин 3000, Секусепт Форте.

Спирты. Это группа препаратов на основе этанола, пропанола, изопропанола. Такие средства как Бациллол плюс, Деконекс Соларсепт используют для дезинфекции поверхностей и оборудования. 70 % этиловый спирт используется как кожный асептик.

Среди фенолсодержащих препаратов можно рекомендовать Амоцид и Амоцид 2000, которые эффективны для проведения текущей и заключительной дезинфекции в очагах туберкулеза для обеззараживания биоматериала от больных.

Как проводят дезинфекцию

Медицинские изделия погружают в дезраствор сразу же после их использования. При этом дезраствор должен полностью покрывать инструменты не менее 1 см над их поверхностью. Изделия сложной конфигурации дезинфицируют в разобранном виде. Каналы и полости изделий заполняют дезинфицирующим раствором так, чтобы в них не оставалось пузырьков воздуха. Сильно загрязненные инструменты нужно подвергать двукратной обработке.

Хлорсодержащие средства, например, Хлорамин Б, Клорсепт, применяют в основном для дезинфекции изделий медицинского назначения из стекла, пластмассы, резины, коррозионно-стойкого материала или отработанного перевязочного материала и одноразовых инструментов. Очистка с помощью ерша резиновых изделий не допускается!

Для дезинфекции многоразового металлического инструментария рекомендуется использовать препараты, которые не вызывают коррозии. Правда, эти дезсредства стоят дороже. Но экономить не стоит. Ведь стоимость металлических многоразовых инструментов намного выше.

По окончании дезинфекционной выдержки изделия промывают. Оставшиеся загрязнения оттирают с помощью ершей, щеток, салфеток под проточной питьевой водой либо в специальных моющих аппаратах.

Обратите внимание. Поскольку альдегидосодержащие дезсредства достаточно токсичны, при работе с ними персоналу следует соблюдать особые меры предосторожности:

* рабочие растворы из концентратов готовьте в отдельных хорошо вентилируемых помещениях с достаточной кубатурой;

* во время приготовления рабочих растворов и при работе с ними защищайте органы дыхания респираторами, кожу рук перчатками, а глаза очками;

* рабочие растворы должны находиться только в емкостях с плотно закрытыми крышками! Используйте специальные ванночки — стерилизаторы из полиэтилена. Емкость следует открывать только при необходимости, защищая органы дыхания;

* нельзя разводить исходный концентрат теплой и тем более горячей водой. Это усиливает  вредные испарения с поверхности раствора;

* промывка изделий под проточной водой до дезинфекции не допускается. Ведь аэрозоль, образующийся в процессе мытья, может инфицировать персонал, проводящий обработку, а также поверхности помещений. Подчеркнем, однако, что при применении многих альдегидосодержащих дезинфектантов очистка медицинских изделий от загрязнения  все же необходима. Дело в том, что такие дезинфектанты фиксируют белковые загрязнения. Это затрудняет процесс дезинфекции. Поэтому предварительная очистка в данном случае должна проводиться с соблюдением противоэпидемических принципов. Используются специальные емкости. Промывные воды, салфетки, использованные для очистки, обеззараживаются одним из хлорсодержащих дезинфектантов.

 

Практическими вопросами проведения дезинфекции в любом ЛПУ занимаются в основном медицинские сестры. А вот задача администрации медучреждения — обеспечить приобретение эффективных дезпрепаратов, замену их с периодичностью не реже 8-12 месяцев, чтобы предотвратить формирование антибиотикоустойчивых микроорганизмов. На сегодня поставщики предлагают ЛПУ десятки различных дезинфектантов. Реклама у продавцов напористая, сделать правильный выбор не так-то легко.

В письме от 25.01.2006 № 0100/626-06-32 Роспотребнадзор предписал при выборе реагентов для дезинфекции руководствоваться государственным реестром зарегистрированных дезсредств. Найти этот реестр можно, в частности, на информационных ресурсах Роспотребнадзора в сети Интернет.

Перечни некоторых зарегистрированных в нашей стране дезинфицирующих средств доводятся  и специальными письмами Роспотребнадзора. Например, перечень дезсредств, обладающих вирулицидной активностью, отечественного и зарубежного производства приведен в письме Роспотребнадзора от 07.03.2006 № 0100/2490-06-32.

Предстерилизационная обработка

Для инструментария, который соприкасается со слизистыми оболочками и ранами, в том числе операционными, одной дезинфекции недостаточно. Требуется стерилизация. Но перед этим проводят предстерилизационную обработку. Цель — удаление всех мелких частиц, оставшихся после операции, различных белковых загрязнений.

При предстерилизационной обработке используют специально приготовленные растворы, в которые входят вода, перекись водорода и моющие средства «Астра», «Лотос», «Айна», «Прогресс». Можно также применять дезинфектанты, специально предусмотренные для совмещения дезинфекции с предстерилизационной обработкой. Такие препараты очень удобны в работе, позволяют экономить рабочее время персонала, тем самым сокращая затраты ЛПУ. В настоящее время выбор комбинированных препаратов достаточно широк.

При предстерилизационной очистке разъемные медицинские изделия замачиваются в разобранном виде. Все предметы полностью погружаются в раствор с заполнением всех полостей. О качестве же дезинфекции и предстерилизационной подготовки медицинского инструментария судят по результатам биологических и химических анализов.

Важно. Контроль качества предстерилизационной очистки проводят  в ЛПУ ежедневно, под руководством старшей медицинской сестры. Проверке подлежит 1 % изделий от партии, но не менее трех единиц. Качество очистки оценивают путем постановки азопирамовой пробы на наличие остаточных количеств крови, а также путем постановки фенолфталеиновой пробы на наличие остаточных количеств щелочных компонентов моющих средств. При положительной азопирамовой пробе не позднее чем через 1 минуту после нанесения реактива появляется фиолетовое окрашивание, которое вскоре переходит в розово-сиреневое или буроватое.     

При положительной фенолфталеиновой пробе о наличии на изделиях остаточных количеств щелочных компонентов моющего средства свидетельствует появление розового окрашивания реактива. Если пробы на кровь или на остатки щелочных компонентов моющих средств, оказываются положительными, всю партию изделий повторно очищают до получения отрицательных результатов.

Стерилизация

Как мы уже говорили, оборудование и инструменты, которые проникают в стерильные ткани организма или сосуды, контактируя с кровью или инъекционными растворами, относятся к «критическим» предметам. Они должны пройти стерилизацию, чтобы полностью удалились или уничтожились всех виды микроорганизмов, включая споры бактерий. Стерилизация не может быть относительной, она всегда абсолютна! В медицинской практике применяются в основном три вида стерилизации.

Таблица 1. Виды стериализации.

Виды стерилизации	Методы стерилизации	Действующий агент
физический	паровой воздушный гласперленовый инфракрасный	пар под избыточным давлением (120 °С, давление 1,1 атм) (132 °С, давление 2,0 атм)   сухой воздух при 180 °С нагретые стеклянные шарики при 190–240 °С инфракрасное излучение при 200+3 °С
химический	жидкостной плазменный	растворы химических соединений (альдегид-, кислород-, хлорсодержащих) пары 20 % пероксида водорода
газовый	—	окись этилена в смеси с углекислым газом, бромистым метилом и др.

Поясняем. При стерилизации горячим воздухом возбудители болезней уничтожаются высокой температурой 180°С в суховоздушном стерилизаторе. В случае подобной стерилизации в автоклаве эффект достигается уже при 120 °С. Инструменты в него укладывают так, чтобы они не касались друг друга. Для контроля стерилизации используют химические тесты, которые укладывают на каждую полку суховоздушного стерилизатора в виде конверта в 5 точках по четырем краям и в середине. Если хотя бы один химический тест не изменил цвет, стерилизацию всей партии инструментов проводят заново. Обратите внимание, что сроки хранения стерильного материала после этой процедуры незначительные – до 1 суток.

Об успешном проведении стерилизации можно говорить при соблюдении следующих параметров обработки: температурный режим, давление пара, время воздействия (экспозиция).

            Таблица 2. Режимы стерилизации некоторых медицинских инструментов

Способ стерилизации	Температура, °С	Давление, кгс/кв.см	Экспозиция, мин.	Материал обрабатываемых изделий
Сухим горячим воздухом (суховоздушный стерилизатор)	180		60	металл, стекло
Водяным насыщенным паром под избыточным давлением  (автоклав)	132	2,0	20	металл, стекло, текстильные материалы, резина
	120	1,1	45	резина, латекс, отдельные полимерные материалы

Стерилизация горячим паром широко распространена в ежедневной медицинской практике. Ее достоинства – это короткий полный производственный цикл и невысокие температуры. Автоклавная техника а последние годы усовершенствовалась и позволяет при доступном для ЛПУ уровне затрат обеспечивать жесткие требования клинических стандартов.

Одним из основных условий проведения качественной стерилизации является загрузка автоклава в точном соответствии с рекомендациями производителя. Это означает правильное расположение и количество загружаемых предметов. Водяной пар должен свободно циркулировать, а конденсат своевременно выводиться. При загрузке автоклава обратите внимание на то, чтобы тяжелые инструменты располагались на нижних поддонах, а легкие — на верхних.

Изделия загружают в таком количестве, которое допускает свободную подачу воздуха к стерилизуемым изделиям. Не допускается перекрывать продувочные окна и решетки вентиляции. Загрузку и выгрузку изделий проводят при температуре не выше 40-50°С.

Для контроля стерилизации в каждый бикс закладывают специальные термоиндикаторы. Они должны располагаться на трех разных уровнях — нижнем, среднем, верхнем — и позволяют осуществлять как внешний (в камере стерилизатора) и внутренний (в упаковке с изделиями) контроль. После окончания стерилизации и обязательно до использования стерильного материала проверяют тесты. Они должны изменить цвет. Если хотя бы одна полоска не изменила цвет, весь материал повторно стерилизуют.

Срок хранения простерилизованных изделий: в биксах без фильтра, в двойной мягкой упаковке – 3 суток; в пергаменте, бумаге мешочной непропитанной, мешочной влагопрочной, бумаге упаковочной высокопрочной, бумаге крепированной, стерилизационной коробке с фильтром – 20 суток.

Виды стерилизаторов. Плюсы и минусы

Существуют стерилизаторы, в которых используется метод, основанный на применении кратковременного импульсного инфракрасного излучения, создающего в рабочей камере температуру 200+3°С. Время инфракрасной стерилизации инструментария в неупакованном виде составляет от 10 до 25 минут, включая этапы выхода на режим и охлаждения. Однако недостатками такой стерилизации являются отсутствие упаковки инструментов, повреждающее воздействие на полимерные материалы и резину, наконец, отсутствие контролирующих индикаторов.

В настоящее время появляется различная аппаратура для стерилизации мелких инструментов. В качестве примера можно привести гласперленовый стерилизатор. Он представляет собой камеру, наполненную стеклянными шариками, которые нагреваются до температуры 190-240°С. Такой метод стерилизации используется в стоматологии. Однако и он имеет недостатки: можно применять лишь для мелких цельнометаллических инструментов без упаковки. Они стерилизуются в течение 5-15 секунд. У более крупных инструментов для такой обработки доступна только рабочая часть. А полная их стерилизация даже при увеличении экспозиции не удается. Проблемы возникают и со средствами контроля работы этих стерилизаторов.

Недостатком стерилизации жидкими химическими средствами является возможное наличие на очищенном инструментарии следов очистки — остатков токсичных бактерицидных средств. Кроме этого необходимо наличие стерильных емкостей, причем не менее двух, со стерильной дистиллированной водой для отмывания стерилизующего агента. При химической стерилизации может наступать загрязнение микроорганизмами простерилизованных инструментов. 

Стерилизация газовым методом более надежна, но технически она весьма сложна. Для нее необходимы особые помещения, аппаратура, согласование с органами санитарного надзора. Тем не менее иногда этому методу нет альтернативы. Ведь не всякая медицинская техника выдержит температурную и жидкостную стерилизацию. К примеру, оптические инструменты, электрооборудование. Но стерилизация газовым методом с применением окиси этилена и формальдегида в России широко не применяется, так как пока разработки отечественной аппаратуры находятся на начальной стадии. В некоторых ЛПУ используют зарубежные газовые стерилизаторы. Заметим, что это оборудование достаточно дорогое. Плюсом стерилизации газовым методом является возможность использования упаковки материалов, которые могут храниться годами. Минусом, помимо его дороговизны, считается существенное время экспозиции (несколько часов), необходимость дегазации при помощи специальной аппаратуры, что дополнительно увеличивает длительность цикла стерилизации.

Существует современный, эффективный, но весьма дорогой метод стерилизации – плазменная очистка в низкотемпературных плазменных стерилизаторах SPS. Принцип работы этой аппаратуры основан на генерации плазмы непосредственно вокруг стерилизуемого материала. Стерилизующим агентом является 20 %-ный пероксид водорода. Процесс происходит в любой части камеры. Контроль температуры осуществляется инфракрасными датчиками. Стерилизация в этом случае представляет собой сухой процесс при температуре от +35 до +50 °С, что гарантирует сохранность инструментов и оборудования, чувствительного к повышенной температуре и влажности. Время стерилизации — от 90 до 120 минут.

Особенности очистки отдельных видов инструментов

Выше мы отнесли к «полукритическим» предметы, контактирующие со слизистыми оболочками или поврежденной кожей, например, ингаляторы и некоторые виды эндоскопов. «Полукритические» инструменты должны подвергаться ДВУ. Но некоторые эндоскопические инструменты относятся к «критическим» и подлежат стерилизации.

Обработка эндоскопов производится непосредственно после их использования и имеет свои особенности, отраженные в табл. 3.

Таблица 3. Порядок очистки эндоскопов

Эндоскопы, используемые для нестерильных эндоскопических манипуляций (гастрофиброскопия, бронхоскопия)	Эндоскопы, используемые для стерильных эндоскопических манипуляциях
1) предварительная очистка 2) окончательная очистка по методике предстерилизационной очистки 3) ДВУ спороцидными средствами	1) предварительная очистка 2) предстерилизационная очистка 3) стерилизация

Особенности очистки, дезинфекции, стерилизации эндоскопов и инструментов к ним содержатся в Методических указаниях МУ 3.5.1937-04, утвержденных Главным государственным санитарным врачом РФ 04.03.2004.

Особые хлопоты ЛПУ доставляет стерилизация термолабильных инструментов. К ним, в частности, относятся лапароскопы. Стерилизация газом окиси этилена или жидкими химическими средствами требует наличие специальной дорогостоящей техники (газовый метод), а также продолжительного времени. Поэтому чтобы не испортить инструмент, во многих стационарах используют дезинфекцию высокого уровня. Однако в отличие от стерилизации ДВУ не уничтожает полностью споры бактерий. Поэтому увеличивается риск инфицирования пациентов. И напомним, что эти изделия после очистки надо хранить в условиях, исключающих вторичное заражение микроорганизмами.

В заключение хочется подчеркнуть, что последовательное и четкое проведение в лечебных учреждениях всех мероприятий по проведению дезинфекции и стерилизации позволит значительно снизить уровень внутрибольничного инфицирования.  

Г.А. КУШНАРЕВА, госпитальный эпидемиолог

Предстерилизационная очистка стоматологических инструментов

После дезинфекции стоматологические инструменты многократного применения при наличии показаний подвергают предстерилизационной очистки и дальнейшей стерилизщации –

Предстерилизационная очистка это II этап обработки стоматологических инструментов. Проводят с целью удаления с инструментария белковых, жировых и механических загрязнений, а также остатков лекарственных препаратов.

Предстерилизационная очисткастоматологических инструментов осуществляется после их дезинфекции и последующего отмывания остатков дезинфицирующих средств проточной питьевой водой. Наиболее целесообразно предстерилизационную очистку и стерилизацию стоматологического инструментария проводить в центральных стерилизационных отделениях (ЦСО).

Предстерилизационную очистку проводят в соответствии с требованиями «Инсткукции по очистке (мойке) и стерилизации стоматологических инструментов» № 1609-77 от 11 марта 1977 г. и требованиями ОСТ 42-21-2-85 «Стерилизация и дезинфекция изделий медицинского назначения. Методы, средства, режимы»,а также препаратов нового поколения, согласно инструкции по применению.

Способы; предстерилизационной обработки стоматологического инструментария

1. ручной

2. механический(с применением специального оборудования).

При проведении предстерилизационной очистки ручным способом нужно строго сдедовать рекомендациям фирмы-производителя по концентрации, температуре раствора и времени обработки. Кроме того, нужно следить за годностью рабочего раствора: некоторые средства используются однократно, двукратно, растворы многих средств применяют до загрязнения (изменение внешнего вида), но не более времени, указанного в инструкции к данному препарату. Растворы на основе перекиси водорода и моющего средства можно использовать до шести раз в течение рабочей смены (если раствор не загрязнен, т.е. не изменил свой внешний вид). Следует иметь в виду, что после обработки инструментария, загрязненного кровью, моющий раствор немедленно выливается и заменяется свежим.

Нужно отметить, что применение новых, более эффективных средств и методов обработки инструментария позволяет не только ускорить и упростить проведение некоторых этапов, но и объединить дезинфекцию и предстерилизационную очистку, проводя их одновременно.

После предстерилизационной очистки инструменты промываются проточной водой (3 минуты) , ополскиваются дистиллированной водой (30 секунд) и высушиваются горячим воздухом (t= 85⁰С) до полного исчезновения влаги.

Предстерилизационная очисткамеханическим способом– это усовершенствование процесса предстерилизационной очистки, вместо ранее применяемого ручного способа обработки с использованием моющего раствора, возможно за счет разработки и внедрения установок, процесс очистки в которых осуществляется путем обработки изделий моющими или моюще-дезинфицирующими средствами в сочетании с ультразвуком. Принцип действия очистителя основан на кавитационном эффекте ультразвука, под действием ультразвуковых волн, излучаемых генератором очистителя, в растворе возникают перепады высокого и низкого давления. В областях низкого давления образуются миллионы мельчайших пузырьков, затем область низкого давления сменяется областью высокого давления, и пузырьки лопаются, как бы взрываются вовнутрь, таким образом, происходит высвобождение большого количества энергии. Она распространяется во всех направлениях, воздействует на поверхность, проникает во все углубления, неровности и трещины. При этом с очищаемого предмета полностью удаляются загрязнения.

В стоматологии обработка ультразвуком позволяет добиться полной очистки боров, эндодонтического и других инструментов от остатков дентина, крови, ротовой жидкости, пломбировочных материалов, чего невозможно добиться при ручной мойке щетками даже после длительного замачивания в моющем растворе.

Применение ультразвуковых ванн для предстерилизационной очистки позволяет:

• сократить тактильный контакт рук медицинского персонала с обрабатываемым инструментарием, что гарантирует снижение риска инфицирования и распространения внутрибольничных инфекций;

• предотвратить повреждения дорогостоящих медицинских инструментов и изделий и увеличить срок их службы;

• значительно улучшить качество очистки медицинских инструментов и изделий сложной конфигурации;

• значительно сократить время обработки при большом объеме инструментов и изделий.

При работе с ультразвуковыми очистителями используют два метода:

1.метод прямой очистки

2.метод косвенной очистки.

При методе прямой очистки предметы, подлежащие обработке, помещают непосредственно в корзину для принадлежностей. Раствор должен полностью покрывать все предметы.

Метод косвенной очистки применяют, когда требуется последовательное использование нескольких растворов или применение специального раствора, который не рекомендуется заливать непосредственно в емкость очистителя. В этом случае основную ванну аппарата заливают жидкостью на ½ — 2/3 объема. Очищаемые предметы помещают во вспомогательную ванночку или лабораторный стакан из перексного стекла и заливают раствором для очистки с таким расчетом, чтобы он полностью покрывал очищаемые предметы, емкость помещают в основную ванну аппарата и закрепляют на специальных держателях так, чтобы дно емкости было слегка погружено в жидкость и не касалось основной ванны.

Извлеченные из раствора инструменты тщательно промываются теплой проточной водой в течение 10 минут, а затем ополаскиваются дистиллированной водой в течение 30 секунд. После промывания инструменты подсушиваются и направляются на стерилизацию.

16. Понятие о предстерилизационной обработке мед инструмента. Этапы, контроля качества стерилизации

Предстерилизационная очистка ручным способом должна осуществляться в последовательности:

а) замачивание в моющем растворе при полном погружении изделия на 15мин при t 4О-5О°С. В качестве моющих p-в используют 0,5% раствор препарата «Биолот» (5 гp «<Биолота» и 99 мл воды питьевой) или комплекс 1.7% перекиси водорода с 0,5% моющими средствами «Пpoгресс», «Лина», «Лотос» б) мойка изделия при помощи ерша или ватно-марлевого тампона в течение 0,5 минут.

в) ополаскивание под проточной водой — в течение 3-10 мин ополаскивание дистиллированной водой – в теч 0,5 мин.

д) сушка горячим воздухом в сушильном шкафу при температуре 85°С до полного исчезновения влаги.

Предстерилизационную очистку изделий мед-го назначения осуществляют после их дезинфекции и последующего отмывания остатков дезинфицирующих средств проточной питьевой водой

Для предстерилизационной очистки используют средства(Биолот,Аламинол,Септабик,Септодор,Лотос,Пероксимед и др.), в том числе электрохимически активированные растворы (католиты). Раствор, содержащий перекись водорода и моющее средство (Лотос, Лотос-автомат, Астра, Айна, Маричка, Прогресс), готовят в условиях ЛПУ, применяя перекись водорода мед или техническую (марки А и Б).

Для предстерилизационной очистки ручным способом используют емкости из пластмасс, стекла или покрытых эмалью (без повреждений).

Методика проведения предстерилизационной очистки механизированным способом должна соответствовать инструкции по эксплуатации, прилагаемой к конкретному оборудованию.

При наличии у средства, наряду с моющими, также и антимикробных свойств (в том числе обязательно в отношении возбудителей парентеральных вирусных гепатитов и ВИЧ-инфекции) очистка изделий на этане замачивания или кипячения в растворе м/б совмещена с их дезинфекцией. Разъемные изделия подвергают очистке в разобранном виде.

При замачивании или кипячении в моющем растворе изделия полностью погружают в раствор моющего средства, заполняя им каналы и полости изделий.

Мойку изделий осуществляют с помощью ерша, ватно-марлевых тампонов, тканевых салфеток; каналы изделий промывают с помощью шприца. Использование ерша при очистке резиновых изделий не допускается.

Для очистки растворы средств Биолот, Биолот-1, Лизетол АФ, Бланизол, Пероксимед, Септодор, а также средство Гротанат, католиты и анолиты используют однократно; растворы средств Луч, Зифа, Дюльбак — двукратно.

Растворы остальных средств допускается применять до загрязнения (появление первых признаков изменения внешнего вида), но не более чем в течение времени, указанного в методическом документе по применению конкретного средства.

При применении растворов, содержащих перекись водорода с моющим средством, растворов моющих средств Лотос, Лотос-автомат, Астра, Айна, Маричка, Прогресс, а также натрия двууглекислого неизмененный раствор можно использовать до шести раз в течение рабочей смены. Сушку изделий, имеющих оптические детали, проводят путем протирания чистой тканевой салфеткой и просушиванием при комнатной t.

Контроль кач-ва предстерилизационной очистки проводят центры Гос.сан-эпид. надзора и дезинфекционные станции не реже 1 раза в квартал.

Самоконтроль в ЛПУ проводят: в централизованных стерилизационных (ЦС ) ежедневно, в отделениях — не реже 1 раза в неделю; организует и контролирует его старшая м/сестра (акушерка)

Качество ПСО изделий оценивают путем постановки (азопирамовой или амидопириновой пробы на наличие остаточных количеств крови , а также путем постановки фенолфталеиновой пробы на наличие остаточных количеств щелочных компонентов моющих средств.

В шприцы вносят 3-4 капли рабочего раствора реактива и несколько раз продвигают поршнем для того, чтобы смочить реактивом внутреннюю поверхность шприца, особенно места соединения стекла с металлом, где чаще всего остается кровь; реактив оставляют в шприце на 1 мин, а затем вытесняют на марлевую салфетку. При проверке качества очистки игл реактив набирают в чистый, не имеющий следов коррозии шприц. Последовательно меняя иглы, через них пропускают реактив, вытесняя 3-4 капли на марлевую салфетку.

Качество очистки катетеров и других полых изделий оценивают путем введения реактива внутрь изделия с помощью чистого шприца или пипетки. Реактив оставляют внутри изделий на 1 мин, после чего сливают на марлевую салфетку. Количество реактива, вносимого внутрь изделия, зависит от величины изделия.

Учет результатов постановки проб.

При + азопирамовой пробе в присутствии следов крови немедленно или не позднее, чем через 1 мин, появляется вначале фиолетовое, затем быстро в течение нескольких секунд переходящее в розово-сиреневое или буроватое окрашивание реактива.

Азопирам, кроме гемоглобина, выявляет наличие на изделиях остаточных количеств пероксидаз растительного происхождения (растительных остатков), окислителей (хлорамина, хлорной извести, стирального порошка с отбеливателем , хромовой смеси для обработки посуды и др.), а также ржавчины (окислов и солей железа) и кислот. При наличии на исследуемых изделиях ржавчины и указанных окислителей наблюдается бурое окрашивание реактива, в остальных случаях происходит окрашивание в розово-сиреневый цвет.

При + амидопириновой пробе о наличии на изделиях остаточных количеств крови свидетельствует немедленное или не позже чем через 1 мин после контакта реактива с кровью, появление синефиолетового окрашивания различной интенсивности.

При постановке азопирамовой и амидопириновой проб окрашивание реактивов наступившее позже чем через 1 мин после постановки пробы, не учитывается.

При + фенолфталеиновой пробе о наличии на изделиях остаточных количеств щелочных компонентов моющею средства свидетельствует появление розового окрашивания реактива.

стерилизация

С – обеспечивает гибель всех форм м/о на стерилизуемом объектах.

Стерилизации должны подвергаться все изделия, соприкасающиеся с раневой поверхностью, кош актирующие с кровью или инъекционными препаратами, которые в процессе эксплуатации соприкасаются со слизистой оболочкой и могут вызвать ее повреждения.

Стерилизация должна осуществляться при помощи парового, воздушного, химического методами.

Стерилизация паровым методом (водяной пар под избыточным давлением).

При обеих режимах стерилизацию изделий проводят в стерилизационных коробках или двойной мягкой упаковке из бязи, пергамента, бумаги мешочной. Срок сохранения стерильности -соответственно 2-3 суток.

Паровым методом стерилизуют общие хирургические и специальные инструменты, детали приборов и аппаратов из коррозионностойких металлов, стекла, шприцы с пометкой 200°С, хирургическое бельё, перевязочный и шовный материал, изделия из резин (перчатки, трубки, катетеры, зонды и т.д.), латекса, отдельных видов пластмасс

Стерилизация воздушным методом (сухим горячим воздухом).

Этим методом стерилизуют хир.,гинек.,стомат.инструменты, детали приборов и аппаратов,в т.ч. из коррозионностойких металлов, шприцы с пометкой 200°С,иньекционные иглы.

Стерилизацию изделий проводят в упаковке из бумаги. Срок сохранения стерильности — 3 суток.

Стерилизация изделий растворами химических средств является вспомогательным методом, поскольку изделия нельзя простерилизовать в упаковке, а по окончании стерилизации их необходимо промыть стерильной жидкостью (питьевая вода;0,9% раствор натрия хлорида), что при нарушении правил асептики может привести к вторичному обсеменению простерилизованных изделий м/о.

Стерилизация химическим методом (газовым) осуществляется смесью ОБ (окись этилена с бромистым метилом), окисью этилена, смесью паров воды и формальдегида. Стерилизацию газовым

методом осуществл.в стационарных газовых стерилизаторах.Стерилизуют:изделия из полимерных материалов

(резины,пластмассы) стекла и металла.

При стерилизации паровым, воздушным и газовым методами изделия, как правило, стерилизуют упакованными в стерилизационные упаковочные материалы; при паровом методе, кроме того, используют стерилизационные коробки без фильтров и с фильтрами.

Методы и средства контроля работы паровых и воздушных стерилизаторов. Существуют химич.физич. и биологич.методы.

Проверку t режима осуществляют с помощью max-ых термометров, кот помещают в контрольные точки стерилизаторов .Для контроля t используют также химические индикаторы (индикаторы типа ИС химические тесты), которые помешают в контрольные точки.

Химические тесты представляют собой стеклянные трубки, содержащие химические соединения или их смеси с красителями, и предназначены для контроля достижения заданной t по изменению агрегатного состояния или цвета хим соединений, наблюдаемому после окончания стерилизации.

Медицинский персонал, использующий средства физического и хим контроля, регистрирует результаты контроля в журнале по форме N 257/у

Бактериологический контроль работы стерилизационной аппаратуры осуществляют с помощью биотестов на основании гибели спор термоустойчивых м/о. Упакованные биотесты помещают в те же контрольные точки стерилизационной камеры, что и средства физического и хим контроля.

Основанием для заключения об эффективой работе стерилизационной аппаратуры является отсутствие роста тест-культуры при бактериологических исследованиях всех биотестов в сочетании с удовлетворительными результатами физическою и химического контроля.

Контроль стерильности изделий медицинского назначения.Контроль стерильности изделий,простерилизованных в ЛПУ,проводят в специально оборудованных помещениях,соблюдая асептические условия.

4.4. Контроль стерильности проводят путем прямого посева (погружения) изделий целиком (при их небольших размерах) или в виде отдельных деталей (разъемные изделия) и фрагментов (отрезанные стерильными ножницами кусочки шовного, перевязочного материала и т.п.) в питательные среды. Объем питательной среды в пробирке (колбе, флаконе) должен быть достаточным для полного погружения изделия (деталей или фрагментов изделия).

При проверке стерильности более крупных изделий проводят отбор проб методом смывов с различных участков поверхности изделий: с помощью стерильного пинцета Каждую салфетку помещают в отдельную пробирку с питательной средой.

При отсутствии роста м/о во всех пробирках (колбах,флаконах)делают заключение о стерильности изделий.

Предстерилизационная очистка. Этапы, контроль качества предстерилизационной очистки :: BusinessMan.ru

Предстерилизационная обработка является необходимым условием для того, чтобы очистить инструменты и все изделия медицинского назначения от разного рода жировых, белковых, других механических загрязнений и остатков лекарственных средств. Такую очистку необходимо проводить, так как именно инструменты и материалы представляют собой самый приоритетный фактор при передаче инфекций гемоконтактного характера. Чтобы минимизировать риск заражения, в современной медицинской практике практикуется применение одноразовых расходных материалов и 3-ступенчатая обработка инструментов и изделий многоразового применения (дезинфекция, предстерилизационная очистка, стерилизационные мероприятия).

Почему недостаточно только дезинфекции?

Этого действительно недостаточно для дальнейшего безопасного применения инструментов и медицинских изделий, уже бывших в употреблении. Во время проведения дезинфекции могут быть допущены ошибки, которые без двух остальных этапов обработки (предстерилизационная очистка, стерилизация) не позволят получить биологически безопасный инструментарий.

Во-первых, для дезинфекции могут быть использованы средства и методики, не разрешенные к применению. Возможно, на вещества отсутствует требуемый разрешительный пакет документов, либо его использование недопустимо в учреждениях лечебно-профилактического профиля, либо оно (средство) вообще фальсифицировано и не может применяться с какой бы то ни было целью.

Во-вторых, могут быть нарушены условия, при которых эти средства для дезинфекции хранились и транспортировались (температурный режим, длительное нахождение в зоне влияния прямого солнечного света, истекший срок годности). Средство может быть неверно подобрано (не уничтожает возбудителей гепатитов группы В и С, ВИЧ), что делает дальнейшие действия, в частности, такое как предстерилизационная очистка и мероприятия по стерилизации, бесполезными.

Кроме того, неверно выбранный режим дезинфекции не обеспечит уничтожения возбудителей гемоконтактных инфекций. Да и сама дезинфекция может быть проведена некорректно (ошибки при расчете концентрации, не соблюдено время экспозиции, у рабочего раствора истек срок годности).

Факторы риска при очистке

Даже одна (не говоря уже о нескольких) ошибка практически сводит на «нет» эффективность дезинфицирующих мероприятий. В итоге предстерилизационная очистка изделий медицинского назначения может представлять опасность для медперсонала в биологическом плане.

Помимо этого, существует вероятность инфицирования в процессе проведения второго этапа очистки по причине непосредственного контактирования медработника с инструментами и изделиями. В наибольшей степени это можно отнести к ручному типу обработки (будет описан ниже), однако при механическом человек также соприкасается с инструментарием при перекладывании и сортировке.

Далее важно, чтобы медперсонал во избежание инфицирования не пренебрегал средствами индивидуальной защиты (речь идет о перчатках). Еще стоит сказать о том, что основная масса современных дезинфицирующих средств предназначена для совмещения таких процессов, как дезинфекция и предстерилизационная очистка. Однако погружение в такой раствор медицинского изделия отнюдь не означает, что проведены сразу оба эти мероприятия – и дезинфекция, и очистка. После окончания первого этапа должен быть обязательно проведен второй.

Обработка ручным способом

Этапы предстерилизационной очистки ручным способом выглядят следующим образом. После того как все изделия продезинфицированы и тщательно промыты в проточной воде, их в разобранном виде помещают в моющий состав. Все каналы и полости обрабатываемых изделий должны быть полностью погружены в жидкость и ею заполнены. Продолжительность замачивания зависит от применяемого моющего средства и может составлять от 15 минут до 1 часа. Затем каждое изделие отдельно моют ершиком или протирают ватно-марлевым тампоном не менее 1 минуты.

Далее изделия и инструменты ополаскиваются в проточной воде. Продолжительность процедуры зависит от применяемого средства. В раковине, которая используется на этом этапе, недопустимо мытье рук медперсонала.

Последний этап при ручной обработке состоит в том, что все изделия и инструменты ополаскиваются в дистиллированной воде и просушиваются в потоке горячих воздушных масс.

Совмещенная обработка

Медицинская предстерилизационная очистка может быть совмещена с мероприятиями по дезинфекции, и проводится она вручную. На начальном этапе все изделия замачивают в специальных моющих средствах, обладающих дезинфицирующими свойствами. Далее каждая обрабатываемая единица по отдельности моется ершиком или очищается ватно-марлевым тампоном на протяжении 1 минуты. Здесь важно помнить о поддержании температурного режима, если это оговорено в инструкции по применению моющего состава.

Далее каждая единица инструментария и медизделий ополаскивается в проточной воде на протяжении времени, необходимого для конкретного средства (указано в инструкции). Применение раковины, в которой производится процедура, для других целей недопустимо. На конечном этапе каждая единица ополаскивается дистиллированной водой и сушится под горячим воздухом.

Механический способ очистки изделий

В современных больших лечебных учреждениях чаще всего применяется механическая предстерилизационная очистка изделий. Все инструменты и изделия помещают в специальное оборудование, основные функции которого — проведение мероприятий по дезинфекции и предстерилизационной обработке. Для такого вида работ могут быть использованы дезинфицирующие вещества, обладающие дополнительно моющим эффектом, или предназначенные отдельно для дезинфицирования и мойки. Если дезинфекция осуществляется термическим способом, то для дальнейшей очистки возможно использование только моющих средств. Если для конкретного оборудования оговорена какая-то другая технология, значит, мероприятия по очистке проводят в соответствии с инструкцией.

Далее изделия и инструменты ополаскивают в проточной воде. Продолжительность процедуры – согласно инструкции по использованию моющего средства. Этот этап может являться частью функционального цикла задействованного оборудования.

Завершается механическая предстерилизационная очистка ополаскиванием (вода дистиллированная) всех обработанных элементов и сушкой горячими воздушными массами. Этот этап также может являться частью функционального цикла применяемого оборудования.

Преимущества механической обработки

Сегодня наиболее перспективной и предпочтительной считается предстерилизационная очистка медицинских изделий механическим способом. И тому есть несколько причин.

На самом высоком уровне обеспечивается биологическая безопасность медперсонала, так как тактильные контакты людей с медицинскими инструментами и изделиями сведены к минимуму. Далее, этот способ самый экономически эффективный, так как, во-первых, для обработки большого количества инструментов и медицинских изделий не требуется много времени, а во-вторых, сводится к минимуму возможность повредить дорогостоящий инструментарий (как результат — увеличивается срок его службы).

При таком способе очистки обеспечивается наибольшая биологическая безопасность пациентов: изделия и инструменты самой сложной конфигурации качественно очищаются.

Оборудование и выбор моющих средств

В настоящее время на территории РФ зарегистрированы и разрешены к использованию два вида оборудования для механической обработки, имеющие существенные различия. Принцип работы одного основан на использовании ультразвука. Предстерилизационная очистка инструментов в другом виде оборудования осуществляется моющими средствами, не содержащими в своем составе дезинфекционных компонентов, так как дезинфекция проводится термическим способом. Этот вид оборудования в медицинской среде носит название термодезинфектора.

Второй вид оборудования обладает явными преимуществами перед ультразвуковыми аппаратами, т. к. в термодезинфекторе, по сути, осуществляется полный цикл обработки медизделий и инструментария – дезинфекция, очистка, ополаскивание, сушка. На долю человека остается корректно провести загрузку инструментов, а затем правильно их извлечь.

Еще один важный нюанс – это подбор моющих средств. Разрешены для использования два вида: на основе ПАВ (поверхностно-активных веществ) и ферментов. Первые обладают высокими моющими качествами и более востребованы на рынке. Однако у этих средств имеются некоторые недостатки.

Во-первых, для них характерно высокое пенообразование, а это может стать критичным фактором ввиду несовместимости моющего состава и оборудования при механической очистке.

Во-вторых, после моющих, произведенных на основе ПАВ, на обработанной поверхности медицинских изделий и инструментов остается пленка, для смывания которой потребуется особенно тщательное ополаскивание.

В-третьих, чтобы получить самый оптимальный результат, требуется поддерживать определенную температуру, при которой проводится предстерилизационная очистка.

Моющие вещества, изготовленные на основе ферментов, обладают возможностями разрушения не только стенок бактериальных клеток, белковых оболочек вирусов, но и биопленки. Помимо этого, для ферментированных моющих средств характерно низкое пенообразование, и они не теряют активности при комнатных температурах.

Контроль качества: остатки биологических жидкостей

Для определения остатков крови контроль качества предстерилизационной очистки производится с применением нескольких проб: бензидиновой, ортотолидиновой, амидопириновой и азопирамовой.

Бензидиновая проба может осуществляться двумя способами. Водный раствор бензидина хлорида 0,5-1 %-ного (вода — дистиллированная) соединяют с таким же объемом 3 %-ного раствора перекиси водорода. Второй вариант состоит в приготовлении раствора из 5 мл 50 %-ной уксусной кислоты и 0,025 г бензидина сульфата с перекисью водорода (3 %) в объеме 5 мл.

Ортотолидиновая проба может производиться в 3 модификациях. 5-10 мл основного спиртового раствора (ортотолидин — 4 %, спирт этиловый — 96 %) смешивают с такими же объемами дистиллированной воды и уксусной 50-процентной кислоты. Вторая модификация состоит в смешивании реактива, состоящего из 0,25 г ортотолидина и равных объемов (по 5 мл) 50 %-ной уксусной кислоты и 3 %-ной перекиси водорода. Третий вариант состоит в соединении равных объемов 1 %-ного водного раствора ортотолидина и 3 %-ной перекиси водорода.

Для того чтобы провести контроль предстерилизационной очистки с помощью амидопириновой пробы, готовят реактив из одинаковых (2-3 мл) объемов 5 %-ного спиртового раствора амидопирина, 30 %-ной уксусной кислоты и 3 %-ной перекиси водорода. 2 капли готового реактива наносят на негорячую поверхность. В случае если проба приобрела сине-фиолетовый оттенок, поверхность очищена недостаточно качественно.

Реактив для проведения азопирамовой пробы изготавливают на основе исходного раствора азопирама. В свою очередь, этот раствор состоит из смешанных вместе 100 г амидопирина и 1 г соляно-кислого анилина, дополненных до 1 л этиловым спиртом (95 %). Приготовленный таким образом состав можно хранить (тара – закупоренный флакон) без доступа света при комнатной температуре на протяжении 1 месяца, в холодильнике – до 2 месяцев. Когда потребуется проводить пробу, смешивают в равных долях исходный азопирам и 3 %-ную перекись водорода. Если после нанесения реактива на холодную поверхность проба становится фиолетовой, а затем быстро меняет цвет на розово-сиреневый, значит, на инструментах и изделиях присутствуют остатки крови.

При проведении азопирамовой пробы важно учесть некоторые особенности реакции. Приготовленный для проверки реактив допустимо использовать не позднее чем в течение 1-2 часов. Хранить его в это время при ярком свете и повышенной температуре недопустимо. Изменение цвета пробы, наступившее спустя минуту после нанесения, не дает оснований считать, что качество предстерилизационной очистки не соответствует требуемому по инструкции.

В процессе предстерилизационной очистки весьма нежелательно вместо перекиси водорода использовать таблетки гидропирита. Причина в том, что раствор гидропирита способствует быстрому образованию коррозии, а это приводит к порче инструментов, особенно с режущими плоскостями. Если ощущается дефицит медицинской перекиси водорода, ее допустимо в процессе обработки заменить технической перекисью марки А и Б.

На контролируемые изделия наносят капли реактивов. При наличии остатков крови состав окрашивается в сине-зеленый цвет.

Контроль качества: остатки моющих средств

Все этапы предстерилизационной очистки при любом способе обработки (ручной, совмещенный, механический) завершаются ополаскиванием медицинских изделий и инструментов. Качественно ли проведен этот этап, можно определить с помощью фенолфталеиновой пробы. 1-2 капли однопроцентного спиртового раствора фенолфталеина наносят на обработанное (т. е. вымытое) изделие. Если оно вымыто недостаточно качественно, и на его поверхности присутствуют остатки моющих средств, проба приобретет розовый оттенок.

Пробы положительные…

Если хотя бы одна из проводимых проб даст положительный результат, значит, на обработанных поверхностях присутствуют либо кровяные загрязнения, либо остатки моющих средств, с применением которых проводилась обработка. В таких случаях все изделия и инструменты подлежат повторной обработке до тех пор, пока контроль качества предстерилизационной очистки не даст отрицательных результатов (т. е. пробы не будут изменять цвет).

Контролю качества и эффективности предстерилизационной очистки должен подвергаться 1 % каждого инструмента и вида изделий, которые проходят обработку в течение суток. Специалисты дезинфекционных или санитарно-эпидемиологических станций должны контролировать качество предстерилизационной обработки в лечебных и лечебно-профилактических учреждениях не реже, чем 1 раз в течение квартала.

Стерилизация матариалов, инструментов и других изделий медицинского назначения

Стерилизация инструментов и изделий медицинского назначения

Стерилизация изделий медицинского назначения состоит из 3 этапов: дезинфекции, предстерилизационной обработки и стерилизации.

Дезинфекции подлежат все инструменты и приборы, используемые во время операций и хирургических манипуляций. Весь использованный инструментарий, шприцы, иглы, катетеры, зонды и т. п. погружают в емкость с 3% раствором хлорамина или 0,5% раствор дезоксона, где их моют, промывая просветы игл, а затем погружают в такой же раствор на 60 мин. С этой же целью используют также 0,5% раствор хлорной извести, 6% раствор перекиси водорода и другие препараты (см. раздел “Антисептика”).

Предстерилизационная обработка (второй этап обработки инструментов, ОСТ-42-21-2-85) проводится после дезинфекции и отмывания остатков дезинфицирующего средства чистой проточной водой. Цель её – удаление белковых, жировых, механических загрязнений и остатков лекарственных препаратов.

Для предстерилизационной обработки используются различные средства: растворы, содержащие перекись водорода и моющее средство (Лотос, Лотос-автомат, Астра и т. п.), которые готовятся перед применением. Для снижения коррозионного действия этих препаратов целесообразно использовать ингибитор коррозии – 0,14% олеат натрия.

Разъемные изделия подвергают обработке в разобранном виде, а при замачивании полностью погружают в раствор так, чтобы были заполнены все просветы и полости. Мойку осуществляют с помощью ерша, тампонов, тканевых салфеток, каналы промывают с помощью шприца.

Этапы предстерилизационной обработки ручным способом:

1. Ополаскивание под проточной водой – 0,5 мин.

2. Замачивание в моющем комплексе при температуре 40-55 гр. С – 15 мин.

3. Мойка в моющем комплексе при помощи ерша – 0,5 мин.

4. Промывание изделий под проточной водой: а) после использования “Биолот” – 3 мин, б) после использования “Прогресса” и “Марички” – 5 мин, в) после использования “Астры”, “Лотоса” – 10 мин.

5. Промывание дистиллированной водой –0,5 мин. или кипячение

в течение 5 мин. в специальной емкости.

6. Сушка горячим воздухом при температуре 80 – 85 гр. С. гр. С до полного исчезновения влаги в воздушном стерилизаторе при открытом вентиляционном отверстии.

В настоящее время существуют средства, позволяющие проводить дезинфекцию и предстерилизационную очистку инструментов в один этап, используя препараты: лизетол, виркон, пироксимед и др. Применение этих средств позволяет сделать процесс обработки инструментов менее трудоемким и сократить время обработки.

Качество предстерилизационной обработки контролируется пробами: на наличие остатков крови с помощью амидопириновой пробы. С этой целью могут использоваться также бензидиновая и ортотолуидиновая пробы. Для определения остатков щелочных компонентов моющих средств используется фенолфталеиновая проба. С помощью азопирамовой пробы можно определить как наличие крови на инструментах, так и компонентов моющих средств.

Азопирамовая проба. Для проведения пробы используется 1,0 — 1,5% раствор солянокислого анилина в 95% спирте. Перед проведением пробы готовится рабочий раствор путем смешивания равных по объему количеств азопирама и 3%-ной перекиси водорода. Подготовленный рабочий раствор (срок годности 1 — 2 часа) наносится на предметы. Проба считается положительной, если цвет реактива изменяется в течение первой минуты. Вначале появляется фиолетовый цвет. Переход фиолетового цвета в розово-сиреневый свидетельствует о наличии следов крови, а появление буроватого окрашивания указывает на неполное удаление моющего средства, хлорсодержащих окислителей, ржавчины (выписка из инструктивно-методических рекомендаций по контролю качества предстерилизационной очистки изделий медицинского назначения с помощью реактива азопирам № 28-6/13 от 26.05.88 года).

Амидопириновая проба. При постановке амидопириновой пробы о наличии остаточных кличеств крови свидетельствует немедленное, или не позже, чем через 1 минуту, появление сине-зеленого окрашивания реактива. Окрашивание, наступившее позже, чем через 1 минуту, не учитывается (методические рекомендации по предстерилизационной очистке изделий медицинского назначения №28-6/13 от 08.06.82 года).

Фенолфталеиновая проба проводится с использованием 1% -спиртового раствора фенолфталеина. Раствор наносится марлевой салфеткой на изделие, или на изделие наносятся 2-3 капли раствора. Результат оценивается в течение 2 минут. При положительной пробе цвет реактива изменится от розового до малинового.

При положительных пробах предстерилизационная обработка повторяется.

Способ стерилизации зависит от вида хирургического инструмента или изделия.

Стерилизация металлических инструментов. Металлические инструменты стерилизуются в автоклаве, или в сухожаровом шкафу. Для стерилизации режущих инструментов используется химический метод. Приборы, снабженные оптикой (фиброгастродуоденоскопы, бронхоскопы, цистоскопы, колоноскопы и пр.) стерилизуются в газовых стерилизаторах или для этой цели используют химические антисептики, такие как хлогексидин биглюконат и др.

Стерилизация изделий из резины и полимерных материалов. Сухие резиновые перчатки стерилизуются в автоклаве. Перед стерилизацией внутри и снаружи они пересыпаются тальком для предохранения от склеивания. Между перчатками прокладывают марлю или бумагу, каждую пару перчаток заворачивают отдельно в марлю или бумагу и в таком виде помещают в бикс. Режим стерилизации при температуре пара 120 гр. С, давлении 1,1 атм. — 45 минут.

Также стерилизуются другие изделия из резины и полимерных материалов. Химический контроль: бензойная кислота с фуксином, ИС на 120 гр С.

Приказ МЗ СССР №720 от 31.07.78 г. и №408 от 12.07.89 г.

Дезинфекция, предстерилизационная очистка и стерилизация

Принято выделять следующие этапы обработки.

1. Дезинфекция. Проводится химическим или физическим методами: их преимуществами являются простота и комфорт использования.
2. Предстерилизационная очистка. Этап обработки инструментов, проводящийся после дезинфекции и их отмывки от дезинфицирующих средств. Самоконтроль проводимой процедуры осуществляется ежедневно.
3. Стерилизация. На данном этапе предпринимается комплекс мероприятий, направленных на то, чтобы уничтожить бактерии и вирусы на хирургическом и прочем медицинском инструментарии.

Дезинфекция

Дезинфекцией называют совокупность мер, предпринимающихся для эффективного уничтожения и обеззараживания микроорганизмов. Впервые человек понял важность проведения дезинфекции во время массовых эпидемиологических заболеваний, от которых погибла треть населения средневековой Европы.

Возникновение разных средств, специально предназначенных для проведения медицинской дезинфекции, позволило максимально снизить количество заражений, а также предотвратить распространение эпидемий опасных болезней.

Цель дезинфекции – профилактика и предотвращение распространения инфекционных заболеваний, а также формирование приемлемых условий лечения и жизнедеятельности. Вовремя проведённые дезинфекционные мероприятия позволяют облегчить лечение болезней.

Предстерилизационная очистка

Это 2-й этап обеззараживания медицинского инструментария, который сразу следует за дезинфекцией. Цель её проведения – удаление загрязнений всех видов. Уровень качества предстерилизационной противоэпидемической очистки проверяется рядом проб. Так, в соответствие с санитарными требованиями берутся пробы на присутствие остатков крови и прочих видов биологического материала на инструментарии, а также на наличие определённого количества порошка и других веществ.

Для того, чтобы обеспечить избавление от микроорганизмов используются следующие средства (антисептики):

• Аламинол. Используется для промывки изделий из пластмасс, металлов, включая резервуары и контейнеры.
• Анолиты. Применяются для очистки стоматологических инструментов, изделий из пластмассы.
• Векс-Сайд. Используется для удаления с хирургических инструментов клеток, имеющих вирусную природу.
• Раствор перекиси водорода. Применяется для очистки многократно использующихся в лаборатории изделий из коррозионностойких металлов, пластмасс, стекла, резин.

Санпин даёт исчерпывающий список средств для очистки перед стерилизацией. Они приведены в инструкциях.

Стерилизация

Так условно называется комплекс мер, предпринимаемых для уничтожения бактерий, грибка, вирусов на предметах, используемых в медицинских учреждениях. Особенно тщательно стерилизуются инструменты и материалы, которые будут вступать в контакт с раной больного. Это предотвращает возникновение заражения и распространение патогенных заболеваний.

Виды стерилизации напрямую зависят от материала, из которого изготовлен медицинский предмет. Существует их следующая классификация:

1. Воздушная. Предполагает собой обработку сухим горячим воздухом. Инструментарий из металла и стекла помещается в специальный сухожаровой шкаф. Режимы стерилизации бывают следующие: при 180 градусах предметы обрабатываются в течение 60 минут, при 160 – 150 минут.
2. Паровая (паровоздушная). Это способ уничтожения бактерий и прочих микроогранизмов на медицинский предметах посредством использования горячего пара. Такой вид стерилизации применяется для металлических инструментов, резиновых перчаток, стеклянных шприцев и пробирок, перевязочного материала. Режимы: 132 градуса Цельсия – 20 минут, 120 градусов Цельсия – 45 минут.
3. Химическая. Согласно нормативам – это помещение предметов и инструментария в раствор антисептика. Таким способом можно очищать изделия из резины, стекла и прочих материалов, не выдерживающих обработки теплом. Используются Дезоксин, 70% раствор спирта и 2% раствор хлоргексидина.
4. Газовая. Некоторые газы способны оказывать бактерицидный эффект на стерилизуемый предмет. Больше всего такой метод подходит для очистки предметов из полимеров. Специалисты используют при такой стерилизации окись этилена.
5. Лучевая. Данный способ стерилизации проходит с помощью ионизирующего излучения или ультрафиолетового облучения. Применяется для обеззараживания эндопротезов, одноразовых медицинских изделий, шовных материалов.

Поэтапный контроль

Контроль за качеством проведённых дезинфекционных мероприятий проводится на каждом этапе и зависит от его особенностей.

Виды контроля дезинфекции:

1. Визуальный. Проводится сотрудником дезстанции, который должен выяснить состояние объекта, а также правильность следования инструкциям и алгоритмам дезинфекции.
2. Химический контроль. Предполагает забор проб дезинфицирующих растворов на содержание активного хлора. Специалист обязательно отмечает дату пробы, концентрацию раствора, указанную на этикетке.
3. Бактериологический контроль. Внезапное мероприятие для персонала: пробы забираются не позже 60 минут после окончания дезинфекции. Специалисты берут смывы с медицинских инструментов, посуды, с рук медперсонала.

Определение качества предстерилизационной обработки происходит посредством следующих методов:

• Азопирамовая проба. Определяет следы крови, наличие на инструментах растительных веществ, стирального порошка, кислот и коррозии. Если проба положительная, то вся партия предметов проходит повторную обработку до того момента, пока не будет получен нужный результат. Проба считается положительной в том случае, если раствор меняет свой окрас в течение 60 секунд.
• Фенолфталеиновая проба. Реактив пипеткой наносится на контролируемый предмет. Результат появляется в течение 120 секунд. Проба признаётся отрицательной в том случае, если реактив не меняет свой цвет.

Контроль процесса стерилизации проводится посредством двух методов:

1. Физический контроль проводится при помощи специальных приборов, определяющих уровень давления, температуры, а также время.
2. При химическом контроле используются специальные тесты и индикаторы. Их помещают в специальные стерилизационные коробки (боксы). В случае, если контроль дал нежелательные результаты, все материалы считаются нестерильными и вновь подвергаются серии профилактических мероприятий.
3. Эффективность стерилизации также может определяться бактериологическим методом. В его ходе используются стерилизационные биотесты. Заключение делается на основании скорости гибели тест-микроорганизмов.

Официальные документы

При проведении дезинфекции необходимо учитывать требования, размещённые в специализированных документах:

• Инструкция по организации контроля за проведением дезинфекции.
• Инструкция по проведению всех этапов дезинфекции.
• Инструкция по мерам безопасности, предпринимаемым во время работы с антисептиками и прочими средствами.
• Инструкцию по расчёту и определению потребности в средствах для проведения дезинфекции в лечебных учреждениях.

Ответственность

Согласно приведённым выше документам, вся ответственность за выполнение норм и правил дезинфекционных мероприятий возлагается на непосредственных исполнителей. Ответственным за государственный надзор назначается главный врач лечебного учреждения.

Распространённые ошибки при дезинфекции

1. Использование средств в неправильной пропорции при изготовлении растворов.
2. Неправильный временной период использования созданного раствора, нарушение методических указаний.
3. Несоответствующий методике проведения дезинфекционных мероприятий выбор способа дезинфекции для инструментария. Подобная ошибка может привести к распространению спорообразующих и прочих микроорганизмов.
4. Неправильная последовательность действий. Нарушение очередности операций существенно снижает эффект от деконтаминации, повышая шансы на определение положительной пробы во время контроля.
5. Несоответствующая методике экспозиция (размещение) раствора на поверхности обрабатываемого предмета.
6. Некоторые части инструментария и вовсе не подвергаются обработке.

Принятие дезинфекционных мер позволяет избежать возникновения осложнений во время лечения и в общем повысить его качество. Правильное следование всем этапам и рекомендациям обеспечивает эффективность проводимых процедур.