Журнал приготовления дезинфицирующих растворов образец

журнал приготовления дезинфицирующих растворов образец

Мы поможем быстро получить готовые страницы для «Журнала учета дезинфицирующих средств»,. Дезинфекция изделий из стекла, металла, термостойких материалов и резины. Журнал приготовления дезинфицирующих и моющих растворов для микробиологической лаборатории. Приготовление и хранение дезинфицирующих растворов проводят в отдельных, темных и хорошо. Количество рабочего раствора дезсредства для однократной. Вы можете прикрепить файл с образцом нужного журнала. Журналы ЖУРНАЛ разведения дезинфицирующих растворов. Журнал приготовления дезинфицирующих растворов образец. Приготовление дезинфицирующих растворов. Журнал контроля концентраций рабочих растворов дезинфицирующих и стерилизующих средств предназначен для регистрации. Приказ Министерства здравоохранения Республики Беларусь от 25. ПРИГОТОВЛЕНИЕ МОЮЩИХ И ДЕЗИНФИЦИРУЮЩИХ РАСТВОРОВ РАЗНОЙ КОНЦЕНТРАЦИИ — раздел Образование, Алгоритмы манипуляций по основам сестринского дела Цель:. Берут образцы стерилизовавшегося материала и сеют на питательные Среды, не нашли микробов — значит. Выше было рассказано о различных способах дезинфекции. Документацию: журнал приготовления 10% раствора хлорной извести, журнал контроля сухого. Документацию: журнал приготовления 10% раствора хлорной извести, журнал контроля сухого препарата по активному.Журнал контроля концентраций рабочих растворов дезинфицирующих и стерилизующих средств, образец. Порядок приготовления дегазирующих, дезактивирующих и дезинфицирующих растворов и их применения. Уборка помещения — сложный процесс, маркировка инвентаря — обязательное правило, приготовление дезинфицирующих растворов (. Инструкция по приготовлению дезинфицирующего раствора. Манипуляция №1: Приготовление дезинфицирующих растворов. Контроль рабочего раствора дезинфицирующего средства «Триацид. Техника приготовления дезинфицирующих растворов. Приготовление и использование дезинфицирующих растворов различной концентрации в соответствии с. Приготовление моющих и дезинфицирующих растворов разной концентрации. T——T——+ ¦ ¦дезинфекции ¦объ- ¦. Для приготовления 10% маточного раствора хлорной извести медсестра надела клеенчатый фартук, перчатки,. Для приготовления рабочих дезинфицирующих растворов, а также ополаскивания необходимо использовать воду, соответствующую требованиям СанПиН 2.1.4.1074. Устранение ошибки: Приготовление рабочего раствора дезинфицирующего средства только на основании установленным образом утвержденной инструкции по. Приготовление рабочих растворов дезинфицирующих средств для оборудования, дезинфицирующим средством, заданной. Результаты инструктажа заносятся в «Журнал регистрации инструктажей по. По данной инструкции работающие на приготовлении дезинфицирующих растворов.Документацию: журнал приготовления 10% раствора хлорной извести, журнал контроля сухого препарата по. Опустите иглу в дезинфицирующий раствор, находящийся внутри. Приготовление моющих и дезинфицирующих растворов 8. Методические указания по приготовлению дезинфицирующим растворов. Образцы документов. Приготовление моющего раствора. Правила заполнения журнала контроля концентрации рабочих растворов дезинфицирующих и стерилизующих. Пробы для стерилизации / Журнал контроля концентрации рабочих растворов дезинфицирующих и стерилизующих средств -. Жженую известь гасят равным по объему или половинным по весу количеством воды. Оформление журнала учета дезинфицирующих средств. В качестве дезинфицирующих растворов чаще всего используют хлорную известь и хлорамин. АЛГОРИТМЫ ПРИГОТОВЛЕНИЯ ДЕЗИНФИЦИРУЮЩИХ РАСТВОРОВ. Приготовление дезинфицирующего раствора. Методика приготовления дезинфицирующих растворов. Приготовление 10% раствора хлорной извести и его концентрации,в зависимости от использования. Журнал учета приготовления растворов дезинфицирующих средств В-4/Жр-29.
К — концентрация дезинфицирующего раствора.Журнал учета расходования дезинфицирующих средств.Дезинфекция» (1-5 вопрос), теоретического материала лабораторного занятия и манипуляциям№ 6 «Приготовление растворов дезинфицирующих средств»,.Контроль концентрации рабочих растворов Правильная дезинфекция — залог.Комната централизованного приготовления дезинфицирующих растворов оборудуется приточно-вытяжной.Assistina»: дезинфицирующий раствор и масло для смазки поступают под давлением в фиксированный в приборе наконечник (рис.Наш сайт ориентирован на Журнал учета дезинфицирующих средств образец — нужная.Правила приготовления дезинфицирующих растворов.ПРИГОТОВЛЕНИЕ ДЕЗИНФИЦИРУЮЩИХ РАСТВОРОВ РАЗНОЙ КОНЦЕНТРАЦИИ.Полученный результат записывают в прилагаемую этикетку, затем этикетку вклеивают в журнал.Дата приготовления и объем рабочего.Журнал учета получения, расхода дезинфицирующих средств и проведения дезинфекционных работ на.Журнал выдачи дезинфицирующих средств образец — нужная штука.

6 900 руб. / 1 день →

А 20, А 30, А-ДЕЗ, АБАКТЕРИЛ, Абактерил-актив, Абактерил-софт, Абактерил-Хлор, АБСОЛЮПОЛ, АБСОЛЮСЕЙФ люкс, АБСОЛЮСЕПТ, АБСОЛЮЦИД (дикват, ликвид, НУК, окси, форте, энзим), Авансепт (Актив, Дент, салфетки, био, спрей), Авестил (Форте), АВИРАЙТ, Ависепт, Ависептин, АвтоДез, АдаптаКлин (AdaptaClean), Адаптацид, АДОНИУМ-АКТИВ
АДС-521, Аживика, АКВА-ХЛОР, АКВАБРИЗ, АкваДез, АКВАДЕЗ (для экстренной дезинфекции), АКВАдез-НУК 15, Акваминол, Акваминол Спрей, Акваминол Форте, АКВАСЕПТ ПЛЮС, Аквидез, Аквин, Аквистин, Акма-хлор, Акмадез, Акмасепт, Акмасепт Ультра, Акматол, АКРИЛАН, АКТИБОР, АктивБиоПротект, Актизан, АКТОДЕНТ, БОРЕРБАД, АКТОДЕРМ, Актоман, АКТОСЕД (ПЛЮС. ЭНДО), АКТОФЛАЙН, Ал-окси, Аламинол, Аламинол плюс, Алгидоцид Дез (Algidocid Des), Алкацетам-М, Алма-Стерил, Алма-Экстра, Алмадез (Плюс, Хлор, экспресс), Алмадин, Алмасептин гель (ОП), Алмасофт, Алмацид, Алмацид-Н, Алмироль, АЛОДЕЗ, Алодез-хлор, АЛСВЕТ, Алсофт Е, Р (Alsoft R), АЛЬБАВЕТ, Альдезин Ультра, Альдокс, Альдостерил, Альпимед, Альпиника, Альпинол, Альпиокс, Альписептик, Альписептик форте, Альпихлор, АЛЬСЕПТАН, Альтсепт (М), Альфадез, Альфадез (окси, орто, форте, форте при ООИ), Альфадезин, Альфасептин, АЛЬФАСЕПТИН салфетки, Альфоктен, Альциона, АЛЬЦИОНА-ХЛОР, АМАДЕУС, АМАДЕУС-ОП, Амидез, Амидин (аква, плюс), АМИКСАН, Амиксидин, Амилокс, Аминаз, Аминаз-плюс, Аминоцид, Амифлайн, Амифлайн плюс, Амоцид, АМФОЛИЗИН БАЗИК, Анавидин (комплит, Протект, Экспроф, Аниозим ДД1, Аниозим №2, АНИОКСИД 1000, АНИОС ДЛ ТРИ-ЭНЗИМАТИК, АНИОС ПСД МАКСИ, Аниосепт Актив, Аниосжель ИПА, АНИОСКИН, АНИОСКИН колорлесс, АНИОСУРФ ФРЕШЕР, Анолит АНК СУПЕР, Апейрон-Дез, Ардезин, АРЕНАС-Перла-Дез (ARENAS-Perla-Des), АРМАСЕПТИК, Асенол ликид, АСЕПТИК-АКВА, Асептик-МЛ, АСЕПТИК-СПЕЦИАЛЬ, АСЕПТИНОЛ С, Асептинол спрей, Асептопринт Ликвид (ASEPTOPRINT Liquid), АСЕСАЙД, Асмол-Д, Аспирматик, Астера, Астрадез Макс, Астрадез-гель, АСТРАДЕЗ-ЛАЙТ, Астрадез-НУК, АСТРАДЕЗ-ОП, Астрадезим-Эндо, АТЛАНТИС, Афлоран, АХД 2000 — экспресс, АХД 2000-специаль, АХДЕЗ (3000, РЕД, ПРП), Аэродезин 2000, Б 15 (B 15), Б 30 (B 30), Баккалин, Бактераниос SF, Бактерокос ментол, Бактил, БАКТИЛИЗИН, Бактол, Бактол форте, Бактол-окси, Бактосепт (Bactosept), Барьер, Бациллол АФ, Бациллол плюс, БЕЛОДЕЗ, БЕТАДЕЗ, Беталит-Антисептик, Бетасептин, Бетафлор, БИ-2, Бианол, БИГУАНИД ФЛЕХЕ Н, Биодез (Оптима, Супер, Экстра, Экстра ДВУ), БИОЛОК, БИОНСА, БИОПАГ-Д, Биопан, Биор (1, Дез-1, Н), Биоцид-С, БИОЦИДОЛ плюс, Биоэффект, БИСКОП-БИО, БИСКОП-ФОРТЕ, БИЦИН, Бланизол-Пур, БОМИКС плюс, Бонадерм, Бонадерм-АФ, Бонадерм-АФ салфетка, Бонадерм-гель (Актив, ИП салфетка, ОКР, Ультра), Бонасепт (Плюс),  Бонсолар (BONSOLAR), БонЭкстра М, БРАЗОЛ, Браунодерм окрашенный (Braunoderm coloured), Бриллиант (классик, Агу), бриллиантовый свет, Бриллиантовая (магия, сестричка 2, чистота, руки 2, миг, миг Плюс, поток, рай, свет, спрей 2, Бромосепт 50 П, БэбиДез (Ультра), ВАЗА-СОФТ, Вакуцид, Вапусан 2000 Р (Форте, ЭКОНОМ), ВЕЛТАБ, ВЕЛТАЛЕКС (2-М, М),  ВЕЛТАЛЬ (ОРТО, ВЕЛТОГРАН, ВЕЛТОДЕЗ, Велтолен (ЭКСТРА), ВЕЛТОСЕПТ, ВЕЛТОСФЕР (жидкое мыло, ОП), ВЕЛТОЦИД, Венделин, Виндекс, ВИП АНИОС ПРЕМИУМ, Вирапав, ВИРБАКСАН, ВИРБАКСАН-СПРЕЙ, Виродез-форте Р, Вироцид, Вирулен, Висепт, Витабс, ВИТАХЛОР, Волгодез, Гамма, Ганзин-Комби, ГАРМОНИКА, Гексадекон, Гексакварт форте, Гексаниос Г+Р, Гельасепт, ГельасептИзо, Гептаниум, Гигасепт Инстру АФ, Гигасепт ФФ (новый), Гигея дез, ГИПОДЕЗ, Гипостабил, ГЛАВКИСЛОРОД, ГЛАВМЫЛО, Главсепт, ГЛАВХЛОР, Главэнзим, Глуадез, Гранд, Гранокс +, ГРИЗАВЕЙ-Т, Д 10 (D 10), ДВУ-5, Двуосновная соль гипохлорита кальция (ДСГК), Дез иншуранс, Дез-Амин, Дез-хлор, Дез-Яхонт, ДЕЗАВИД+, Дезактив Универсал, Дезактив-М, Дезактив-хлор, Дезалтин, Дезаргент, Дезарексхлор, Дезарект-форте, Дезариксин, Дезаримакс, Дезарисерф, ДЕЗАФЛОР, Дезацин, Дезвур, Дезикварт, Дезилокс, Дезин, Дезинбак супер®, Дезинбак-V, Дезинфект, ДЕЗИНФОРТЕ, Дезиптол, ДезисептИ, ДезисептИ ОП, ДезисептИ Ультра, Дезискраб, Дезисофт, Дезитабс, Дезитол А,, Дезихэнд, Дезклинер, Дезкон, Дезманол Пьюр, Дезо-триз, Дезодент HW (DEZODENT HW), INSTRU (DEZODENT INSTRU), VAC (DEZODENT VAC), WIPE (DEZODENT WIPE), Спрей Альфа(Dezodent Spray Alpha), Дезоксан, Дезоксид окси, Дезолвер клин, Дезолон, Дезомакс глория, Дезомакс-антисепт, Дезомакс-иннова   Дезомикс-И, Дезострим, Дезофран, ДЕЗРЕКС, ДезТаб,, ДезХлорантин, ДезЭлит, Дезэфект (Плюс, Санит, Свежесть, Форвард, Эконом), Декас, ДЕКОНЕКС (50 АФ, 53 ПЛЮС, 55 ЭНДО, Денталь ББ), Деконтаман, Деконтаман Воуш, Декосепт ПЛЮС, Деланокс, Делансаль, Делансин, Деласепт-гель, Делия-септ, Дельсан-Дез (Окси, Профи спрей), Дельсепт, Дельтамин, ДеМоС, Деналь, ДЕНИДЕЗ, Денталь Б100 (Б300), ДЕНТАСЕПТ АСПИРАСИОН SA, Део-бактер, Део-стер, ДЕО-ХЛОР, ДЕОЛИН ЭКСТРА, ДЕРМАКЛИН, Дермамбер (DERMAMBER), ДЕРМАНИОС СКРАБ HF, ДЕРМОГАРД, Дермокол нью (DERMOCOL NEW), ДЕСАМ ОЭкс, Десам Экстра, ДЕСКО ДРИЛЛЬ, ДЕСКОПРЕНТ, Дескорапид, ДЕСКОСАК, Дескосан, ДЕСКОСЕПТ РФ (DESCOSEPT RF), Дескотон экстра, Дескоцид, ДЕСКОЦИД-N, Десон, ДЕСОН УЛЬТРА, ДеФлок Мед, Ди-Миг, ДИ-УЛЬТРА, Ди-Хлор, Ди-Хлор-Экстра, ДИАБАК, Диавайп (DIAWIPE), ДИАДЕЗ, ДИАСЕПТИК (30, 30 ДВС, 30 ОПК, 30 С, 40 гель, ОП, ОПК), ДИАСОФТ био, ДИАСПРЕЙ, Диастерил,

Диацил Макси концентрированный, Дидисан, ДИЖИЗАНТ+, ДИМАКС хлор, Дисмозон плюс (Dismozon plus), Дисподент, (Dispodent), Додексаль-Стерил, Доктор Чистотелоff, Домино, ДП-2Т, ДП-2Т Улучшенный, ДП-Алтай, ДСВУ-1, Дуасепт, Дуацид, Дэзаль, Дюльбак ДТБЛ, Дюльбак растворимый, ЖАВЕЛИН, Жавель Абсолют (СИН, табс, Экстра, СОЛИД, Клейд, Жавельон/НовелтиХлор, Жавельтаб, Жавилар Плюс, Жавилар Эффект, Зета 1 инструментс, ИД 212, 220, ИзАсептик, Известь хлорная, Изисепт, Изорапид Ликвид (ISORAPID Liquid), Изорапид Флор (ISORAPID Floor), ИЗОСЕПТ, Изумруд, Индибак, Индисепт ИЗО, ИНДИХЛОР, Инжениум, ИнструДез, Инструтон Е, Интерсепт, ИНТРОБАК, Инцидез Н салфетки, ИНЦИДИН ЛИКВИД, Инцидин ОксиВайп С, Инцидин Плюс (Incidin Plus), Инцидин Про, ИНЦИДИН ЭКСТРА Н, Картекс плюс (Cartex plus)
КАС-16, КВАЛИЦИД, Квартет, Квинтасепт, Кеми-Сайд Инструмент Плюс (Ультра, Экспресс), Киилто Клориитти Форте, Клин-Энзим, Клиндезин (3000, ОПА плюс, софт, Экстра, Окси, специаль, спрей, Форте, элит +, ОП, ред, Р, энзим, КЛИНИСЕПТ, Клинофорт люкс, Клинэкс, Клиодез, Клиоксид, Клиофокс, Клор Д (Klor De 1000), Клор-Клин, Клорилли, КЛОРСЕПТ, Клорэндез, КОДАН салфетки, КОМБИ-ИНСТРУМЕНТ-N (поверхности), Комбидез (Combides), Контакт, Конти-табс, КОНТИ-ХЛОР, Контисепт, Корсолекс НУК, Корсолин экстра салфетки, Крышталин-АЙСИД (Альдолюкс, Аминолюкс, дезамин, дезолюкс, ОПТИМА, Ф, экодез, Эколюкс, PhN, энзим, Кутасепт Г, Ф, Ладога, Лайк, Лайна (XL, мед, няня, супер Эко), Лактасепт, ЛАКТО, Латацин, Лефанот, Лижен (био, гель, ИП, салфетки), Лизаксин (спрей, ОП, ОП-РЕД), Лизанол, Лизарин, Лизафин, Лизоформин (3000, специаль), Литосанит, Литосептин, Локасепт, Лорена (жидкое мыло), Лорена (лосьон), Люир (Хлор), Люмакс (XL, Асепт, Борер, Дентал, Классик, Окси, Профи, стерил, Хлор, Лайт, МАГОС-ДЕЗ, Майкрошилд Додеман (Гель, Экстра, Додесепт С, Додесепт Т, Дез), Макси-Дез (М), Макси-Септ Аква, Макси-Стерил, Максимус, МАНОРАПИД готовый к применению, Манорм-гель, Манорм-Экстра, Манужель, Манусепт Дез, МАСТЕРСЕПТ, МБИ-2 (Премиум), МД 520, МД-1, МДГР, МДС-2, МЕГАБАК, Мегадез, МегаСепт, Мегацид (форте), МЕДЕЛОКС, МЕДЕТЕРМ, Медилис-3 ДВ ДЕЗ, МЕДИЛИС-Дез, МЕДИХЛОР, Медихэнд, МЕДОНИКА, Мелисептол рапид, Мелисептол фоам, МЕРАГЕЛЬ Сэпто Дерм, Мерида дезинфектин, Меридиан, Микро 10 плюс, Микробак XXL дезинфицирующие салфетки (форте), Микроцид РФ ликвид (салфетки), МИКРОЦИНОЛ, Миксамин (септик, хлор), МИЛГА, Милис форте, МИРАЦИД, Миродез (салфетки), МИРОДЕЗ базик, Миродез мусс, МИРОДЕЗ пур, Миродез специаль для ИМН (для поверхностей, спрей, универ), МИРОКСИД-2000, Миросептик (экспресс, ОП), Мистраль (ОКСИ), Монитор Окси, МультиДез (концентрат, Тефлекс, для воздуха, для посуды), Мультисан Дез, НАТАСАН, НД-105, Нейтро-клин, Необак-Актив, Неоген, Неоклин-Экстра, НЕОТАБС, Неоформ Д плюс (neoform D Plus), НЕТОСПОРИН ФОРТЕ, Низамед, Низамедвита, НИКА дезинфицирующие салфетки, НИКА-АМИЦИД, Ника-антисептик аквамусс, НИКА-АНТИСЕПТИК ЭЛИТ (ИЗОСЕПТИК, НЕОДЕЗ, пенабактер, ПЕРОКСАМ, ПОЛИЦИД, свежесть антибактериальное, септ, ХЛОР, ЛЮКС, Ника-экстра М, ПРОФИ), Новис, Новодез-Форте, НОВОХЛОР, НОНСИД, НУ-САЙДЕКС, Ньюжавел, ОДС-14, ОКА-ДЕЗ, ОКА-ТАБ, Окси-плюс-мед, Оксигенон-S, ОКСИГРАН, Оксидез, Оксидез Р,, ОКСИДЕЗИН, ОКСИЛОСЕПТ, ОКТАВА, ОКТЕНИДЕРМ, ОКТЕНИМАН, ОКТЕНИСЕПТ, ОЛЛСЕПТ ПРО, ОЛЛСЕПТ С, ОПАСТЕР, Опахайд, ОПТИМАКС (интро, проф), Орион, Оросепт Солюшион (OROSEPT Solution), Оросид Мултисепт Плюс (OROCID-MULTISEPT Plus), Оротол плюс (ультра), ОФАЛЬ, ПАЛ-1, Палмер, Пандезин (ДВК), ПВД, ПВК/Дезинфект+, ПЕРАЛ С, Первохлор, Перекись водорода 6%, Перель-СМ, ПЕРЕСВЕТ, Пероксимед, Пероксин, ПЕРОКСИН ПЛЮС, ПЕРОСАН, Перфектан Нью, ПЕРФЕКТАН ТБ, Перформ, Петроксин, Петролайт, Петрофреш, Полиактив ультра, Полидез, ПОЛИКЛИН, Полисепт, Полсепт Плюс (Polsept plus), Предез бесцветный (цветной), Премиум, Премьер, ПРЕСЕПТ, ПРИОЛЬПро-Бак АФ (Pro-Bac AF), ПРОГРИН ДЕЗ-8, Продез Р, Пули-джет плюс (Puli-Jet plus), Пуристерил 340, Пурусепт Про (Purusept Pro, Про Wipes (Purusept Pro Wipes, Про Колор (Purusept Pro Color)), Пюржавель, Пюринель, Раписайд РА, Релай+Он Антисептический гель (ОН Виркон, Он Перасэйф), РизаМед Антисептический гель, РизаМед К1, РИК-Д, Росдез (Окси, энзим), РОТАМИЦИД, РОТАСЕПТ, РусДез Универсал, С 20, СаБиДез, Сабисепт М, Савил Гидрогель, Савил С5, САЙДЕЗИМ, Сайдезим Экстра (Cidezyme Xtra), Сайдекс, САЛДЕЗ, Салфетка Лижен, Салфетки влажные дезинфицирующие, Сальваниос ph7, Сам-Суфи, Самаровка (антисептик, ОП, КОМБИ), Сан Лайт, Сангезин, САНДЕЗ, Сани-Клос 70 (Актив) Салфетки, Санивап-Р, Санидез, Санидекс ОПА (С (АкваЛЕКАРЬ)+активатор+тест-полоски, Санидерм (Saniderm), Санизим, Санилит, Саниоцид РФ, Санипон (Sanipone), Санискраб С, Санитайзед ДЕТ 89-39, Санитель ((Sanitelle), РХ (Sanitelle PX)), Санихайд, Саносил Супер 25, Сапфир (гель), САТ экспресс, САТ-18, Свежесть аква, СЕВЕРЯНИН, Секусепт актив, Секусепт (Мультиэнзим П, Пульвер), Сенсива, Сепдель, Сепотосан-Т, Септабик, Септаксилин-2, СЕПТАКСИН (КА, форте), Септамин, СЕПТИЗОЛ (мини), Септо Актив Неодишер, Септодерм Хаут (Хэнде), Септодор (форте), Септол, СЕПТОЛАЙН, Септолен, Септолиз (кристалл, универсал, форте), Септолит (ДХЦ, софт, Тетра, ТХЦ, форте), Септонорм, Септостерил, Септохлораль, Септоцид Р,, СЕПТОЦИД Р ПЛЮС, СЕПТУСТЕРИЛ, Септустин (М, Антисепт, Серебряная пуля), СКИН ДЕЗ, Скиния, Скинман Сенситив, Славин (Дельта), СЛАВЯНКА, Слайт, СЛЭЙБАК, СОКРЕНА, Соната (Дез, Септ, супер), Софт Кея Мед (Сенсисепт), Софта-ман (Изо), Софтасепт Н (окрашенный), СПИТАДЕРМ, СПРЕЙ С3.29, Стабимед, СТГ-Премиум, Стера СанКей, Стераниос 2%, Стерибак (Steribac, Steridex), Стеридекс 2000 (Steridex 2000), Стеризол, Стерилий, СТЕРИЛЛИУМ, Стериллиум классик без красителей (Sterillium classic pure), Стерилсепт, Стеримакс, Стерисепт М (окси), Стерихэнд, СТЕРОКС, Сульфохлорантин-Д
СУЛЬФОХЛОРАНТИН-паста, СУПРАЦИД, Сурфаниос Плюс, Сурфасейф, Теко-М, Телесфор, Тентамин, Тентамин-Плюс,, ТЕПСИХЛОР 70А, Терецид, Терралин (ТРН 5225), Терралин протект, ТетраДез-Актив, Тетрамин, Тефлекс, ТориОКСИ,, Торисепт, ТориХЛОР, Тотус, Триадез форте, Триазин, ТРИАЦИД, Тридез +, Трикломед, Трилокс, ТриМакс-Актив, Тримицид,
Тримицин-КА, Триосепт, Тристел Дуо Гель для Поверхностей, Триформин Д, Тубисан-М, Ультима, Ультра Софт, Ультрадез-АКТИВ, Ультрадон, Ультрасан, УльтраХлорантин, Ультрацид, УльтраЭнзим, УМД, Уникор-Виго, Ухажер, Ухажёр (мыло), Фавосепт, ФД 312, ФД 366 сенситив (FD 366 sensitive), Фенокси-Стерил, Феноксидез, Фиам-супер, ФлориДез, ФлориСепт, Фолицид ультра, Форидрай, Форизим (энзим+ПАВ), Фориклин, Форимикс, Форисепт, Форисерф, Фориспот, ФОРИСТИЛ, Форсаж, Фортис Дез, ФОРЭКС-ХЛОР, Фрисепт, ХД 410, Хелизим, Хелиматик дезинфектант (Алкалайн, Клинер Нейтрал, клинер энзиматик), Хелипур Ультра, Хемифарм Дез Нью (CHEMIPHARM DES NEW), ХендДез Олл, ХИМИТЕК, Хиросан, Хиросептол, Хлор-А-Дез, Хлор-Ал, Хлор-атака, Хлорамин Б, Хлорапин, Хлоргексидина биглюконата 0,05% водный раствор, Хлоргексидина биглюконата 0,5% водно-спиртовой раствор, Хлорекс (Chlorex), Хлорекс (Полимикс), Хлорель, ХЛОРМИКС, ХЛОРМИНАТ, Хлормисепт, ХЛОРОЛЮКС, Хлоросан, Хлороцид, ХЛОРТАБ, Хлорэксель, Хлорэффект, ХОРТ (денталь, лайт, стома, таблетки), Хоспидермин, Хоспизепт-раствор (Тух), ХТХ Жавель, Централь, Цеприл, Цитростерил, Чистея ЛЮКС, Чистые руки гель, Чистый город, Чистый град, Эверлюкс 63, Эволайн, Эдель, Эземтан, Эквивалент, Экобак, ЭКОБИО ЕБТ 1000, ЭКОБИОАКТАНТ, Экобиоцид М, ЭКОБРИЗ, Эковир, Экомент-форте, Экон-дез, Экопав, Экохлор, ЭКОЦИД, Экочас, Экочас-актив, ЭкстраДез, Элитар, Эмиталь, Эмиталь-Гарант, Эмиталь-комплит, Эмиталь-Протект, Эмпауэр, ЭНДОДЕЗ, ЭндоКвик, Энзилокс, Энзимодез, Энзимосепт, Энтактив, ЭРИГИД ФОРТЕ, Эридеко 11, Эринокс, Эрисан Дез, ЭРИСАН ОКСИ +, Эстилодез, Этея, Этоксамин, Эфликвир, Эффект-Форте, Эффект-форте плюс, ЮниДез, ЮНИСЕПТА Лайт (UNISEPTA LIGHT), ЮниСептик, ЮниХэнд, 3D-септ, 3Е-ЗИМ (3Е-ZYME), AgБион-2 HMI Идо Скруб (HMI IDO SCRUB), Sanitelle PX гель, Kiilto Antibact Forte, КИИЛТО ХЮПО ДИП, МБИ-4, TANA APESIN combi DR, Herli, Сalgonit DS 628, Калгонит ДС 628

Расчет дезинфицирующих средств для уборки

Учет расхода дезсредств

Если говорить в общих чертах, потребность в дезинфицирующих средствах зависит от:

Эти же данные потребуются и непосредственно для дальнейшего расчета расхода дезсредств.

Как проводится расчет?

Расчет расхода дезинфицирующих средств при текущей и генеральной уборках проводится по стандартным формулам. Так, расчет расхода дезсредств для текущей уборки проводится по следующей формуле:

Х1= Q×N×K×S, где

Х1 — потребность организации в дезсредствах при текущей уборке, мл

Q — общее количество текущих уборок (кратность уборок в сутки, умноженное на количество суток за расчетный период)

N — норма расхода на 1 м²,мл (указана в инструкции к средству)

К — нужная концентрация раствора дезинфицирующего средства для текущей уборки

S — общая площадь поверхностей, подвергаемых обработке во время уборки, которая включает:

• площадь помещений;
• S мебели и оборудования;
• S других объектов.

При этом формула расчета дезинфицирующих средств для генеральной уборки выглядит так:

Х2= Q×N×K×S, где

Х2 — потребность организации в дезсредствах при генеральной уборке, мл

Q — общее количество генуборок (кратность генуборок в месяц, умноженное на количество месяцев за интересуемый период)

N — норма расхода на 1 м², мл

К — нужная концентрация раствора дезинфицирующего средства для генеральных уборок

S — общая площадь поверхностей, подвергаемых обработке во время генуборки.

Расчет площади поверхностей

Этот расчет, как правило, представляет для сотрудников наибольшую сложность. Площадь поверхностей помещения, подлежащих дезобработке, рассчитывают так: S пола + S стен.

Площадь мебели рассчитывают следующим образом: ширина × длину, полученную величину умножают на количество стен предмета, которые будут обрабатываться дезсредствами.

Площадь поверхностей сантехнического оборудования принимается за следующие значения:

• S ванны — 3 м²;
• унитаза, умывальника — по 0,5 м²;
• поддона в душевой — 1 м².

Пример: Необходимо рассчитать общую S поверхностей, подвергаемых обработке в маникюрном кабинете. Площадь стен составляет 50 м², пола — 20 м², мебели —15 м², умывальника — 0,5 м². Таким образом, общая S обрабатываемых поверхностей в помещении составляет 85,5 м².

Для проведения текущих и генеральных уборок рекомендуем использовать дезинфицирующие средства «Септолит Лайт» и «Септолит Плюс», купить которые можно в интернет-магазине Septolit.ru.

Вернуться к списку публикаций

Учет дезинфицирующих средств в заведениях здравоохранения

   

вопрос

   
   Как больница должна учитывать дезинфицирующие средства?
   
   

ответ

   
   Прежде всего, напомним, что под дезинфекцией следует понимать уничтожение возбудителей, переносчиков инфекционных болезней путем применения дезинфицирующих средств.
   
   В соответствии с п. 1 разд. I Инструкции по учету медикаментов, перевязочных средств и изделий медицинского назначения в лечебно-профилактических учреждениях здравоохранения, находящихся на государственном бюджете СССР, утвержденной приказом Министерства здравоохранения СССР от 02.06.1987 г. № 747 (далее — Инструкция № 747), дезинфицирующие средства относятся к медикаментам, и их учет осуществляется на общих основаниях согласно этой Инструкции.
   
   Считаем целесообразным вести предметно-количественный учет всех медикаментов, в частности дезинфицирующих средств, что в свою очередь усилит контроль по их использованию и предостережет от нарушений правил их обращения.
   
   Учитывая вышеизложенное, предлагаем осуществить такие шаги:
   
   1. Соответствующим приказом руководителя учреждения назначить материально ответст­венных лиц за прием, хранение и отпуск дезинфицирующих средств, а также ответст­венных лиц отделений и кабинетов,которые непосредственно будут проводить дезинфекцию.
   
   В этом приказе также необходимо указать перечень дезинфицирующих средств, эффективные режимы их применения, регламентируемые инструкциями или методическими указаниями к ним (концентрация, температура рабочих растворов, время экспозиционной выдержки) и определяющие для проведения качественной дезинфекции. Также следует определить площади отделений, перечень медицинского оборудования и инструментария, мебели и т. п., которые необходимо будет обрабатывать, и периодичность такой обработки.
   
   Обратим внимание на то, что лечебно-профилактические заведения могут использовать лишь те дезинфицирующие средства, которые предусмотрены в Государственном реестре дезинфицирующих средств. Такой реестр можно найти на официальном сайте Министерства здравоохранения.
   
   2. Разработать форму Журнала для осуществления учета использования дезинфицирующих средств произвольной формы, которая будет учитывать все необходимые данные (наименование, количество полученного дезинфицирующего средства в концентрированном виде, количество использованного дезинфицирующего средства при его разведении, площадь проведенной дезинфекции и количество обработанного медицинского инструментария, дата проведения и Ф. И. О. лица, проводившего дезинфекцию и т. п.).
   
   Согласно п. 39 Инструкции № 747 по окончании каждого месяца главная (старшая) медицинская сестра подает в бухгалтерию Отчет о движении лекарственных средств, подлежащих предметно-количественному учету по форме № 2-МЗ, который утверждается руководителем заведения. Форма этого отчета может быть использована для списания по данным бухучета и дезинфицирующих средств, в который будут вноситься данные о фактическом использовании этих средств из Журнала учета использования дезинфицирующих средств.
   
   Дезинфицирующие средства в бухучете классифицируются как запасы, потому их учет должен осуществляться в соответствии с требованиями Инструкции по учету запасов бюджетных учреж­дений, утвержденной приказом Государственного казначейства Украины от 08.12.2000 г. № 125(далее — Инструкция № 125).
   
   В соответствии с п. 26 Инструкции № 125 медикаменты, компоненты, бактерицидные препараты, дезинфекционные средства, сыворотки, вакцины, кровь, пленка для рентгеновских снимков, материалы для проведения анализов и перевязочные средства, мелкий медицинский инвентарь (термометры, ланцеты, пинцеты, иглы и т. п.) учреждений, в сметах которых эти расходы предусмотрены по КЭКР 2220 «Медикаменты и перевязочные материалы», учитываются на субсчете 233 «Медикаменты и перевязочные средства».
   
   В связи с тем, что ассортимент и разнообразность фасовок даже одного и того же дезинфицирующего средства, которое предлагается сегодня на рынке, очень обширен, перед учреждениями возникает вопрос о правильном учете таких средств. Например, если приобретена канистра дезинфицирующего средства объемом 5 л, а для приготовления необходимого раствора нужно взять 1 л, то остальное следует учитывать до следующего применения.
   
   Согласно п. 10 Инструкции № 747 персональная ответственность за рациональное использование и учет лекарственных средств возложена на руководителя учреждения. Таким образом, руководитель имеет право на то, чтобы внутренними приказами, распоряжениями или другими методами обеспечить такой учет, формы журналов, график документооборота, порядок передачи, выдачи и т. п., который бы всесторонне учитывал и порядок использования, и учет остатков у одного или многих материально ответственных лиц, и сроки составления отчетности.
   
   ОБРАТИТЕ ВНИМАНИЕ! В соответствии с п. 67 Инструкции № 125 аналитический учет запасов, приобретенных за счет средств специального фонда, ведется по тем же учетным регистрам, но отдельно от операций за счет средств общего фонда.
   
   В соответствии с п. 50 Инструкции № 125 суммы НДС, уплачиваемые при получении (покупке) запасов, не зачисляются в стоимость запасов и относятся на фактические расходы учреждения по КЭКР, предназначенному для приобретения этих материальных ценностей, или относятся к налоговому кредиту.
   
   Ст. 49 Бюджетного кодекса Украины предусмотрено, что распорядитель бюджетных средств после получения товаров, работ и услуг в соответствии с условиями взятого бюджетного обязательства принимает решение об их оплате. Учет операций по приобретению и расчетов за дезсредства производится на субсчете 675 «Расчеты с другими кредиторами».
   
   Учет ведется в разрезе каждого поставщика, для которого отводится необходимое количество строк. Записи в накопительной ведомости осуществляются по каждому документу по мере осуществления операций.
   
   Мемориальный ордер подписывается исполнителем, лицом, проверившим мемориальный ордер, и главным бухгалтером.
   
   Надежда Березюк,
   главный бухгалтер Киевской городской клинической больницы № 8

Рекомендации по коронавирусной инфекции — Детский сад «Катюша» г. Волгодонск

Рекомендации по проведению профилактических и дезинфекционных мероприятий по предупреждению распространения новой коронавирусной инфекции в организациях общественного питания и пищеблоках образовательных организаций

В связи с неблагополучной ситуацией по новой коронавирусной инфекции в Китайской Народной Республике и в целях недопущения распространения заболевания на территории Российской Федерации необходимо обеспечить соблюдение мер предосторожности, а также проведение профилактических и дезинфекционных мероприятий при оказании услуг общественного питания.

Механизмы передачи инфекции — воздушно-капельный, контактный, фекально-оральный.

Меры профилактики:

Соблюдение мер личной гигиены. Недопуск к работе персонала с проявлениями острых респираторных инфекций (повышенная температура, кашель, насморк).

Обеспечение персонала запасом одноразовых масок (исходя из продолжительности рабочей смены и смены масок не реже 1 раза в 3 часа) для использования их при работе с посетителями, а также дезинфицирующими салфетками, кожными антисептиками для обработки рук, дезинфицирующими средствами. Повторное использование одноразовых масок, а также использование увлаженных масок не допускается.

Для проведения дезинфекции применяют дезинфицирующие средства, зарегистрированные в установленном порядке и разрешенные к применению в организациях общественного питания, в инструкциях, по применению которых указаны режимы обеззараживания объектов при вирусных инфекциях.

Профилактическая дезинфекция проводится на системной основе в рамках проведения мероприятий по недопущению распространения новой коронавирусной инфекции и включает меры личной гигиены, использование масок для защиты органов дыхания, частое мытье рук с мылом или обработку их кожными антисептиками, дезинфекцию столовой и кухонной посуды, проветривание и обеззараживание воздуха, проведение влажной уборки помещений с использованием дезинфицирующих средств. Для дезинфекции применяют наименее токсичные средства.

По окончании рабочей смены (или не реже, чем через 6 часов) проводятся проветривание и влажная уборка помещений с применением дезинфицирующих средств путем протирания дезинфицирующими салфетками (или растворами дезинфицирующих средств) ручек дверей, поручней, столов, спинок стульев (подлокотников кресел), раковин для мытья рук при входе в обеденный зал (столовую), витрин самообслуживания.

Для уничтожения микроорганизмов необходимо соблюдать время экспозиции и концентрацию рабочего раствора дезинфицирующего средства в соответствии с инструкцией к препарату. При необходимости, после обработки поверхность промывают водой и высушивают с помощью бумажных полотенец.

При наличии туалетов проводится их уборка и дезинфекция в установленном порядке.

Количество одновременно используемой столовой посуды и приборов должно обеспечивать потребности организации. Не допускается использование посуды с трещинами, сколами, отбитыми краями, деформированной, с поврежденной эмалью.

Организации общественного питания и пищеблоки образовательных организаций рекомендуется оснащать современными посудомоечными машинами с дезинфицирующим эффектом для механизированного мытья посуды и столовых приборов. Механическая мойка посуды на специализированных моечных машинах производится в соответствии с инструкциями по их эксплуатации, при этом применяются режимы обработки, обеспечивающие дезинфекцию посуды и столовых приборов при температуре не ниже 65°С в течение 90 минут.

Для мытья посуды ручным способом необходимо предусмотреть трехсекционные ванны для столовой посуды, двухсекционные — для стеклянной посуды и столовых приборов.

Мытье столовой посуды ручным способом производят в следующем порядке:

• механическое удаление остатков пищи;
• мытье в воде с добавлением моющих средств в первой секции ванны;
• мытье во второй секции ванны в воде с температурой не ниже 40°С и добавлением моющих средств в количестве, в два раза меньшем, чем в первой секции ванны;
• ополаскивание посуды в металлической сетке с ручками в третьей секции ванны горячей проточной водой с температурой не ниже 65°С с помощью гибкого шланга с душевой насадкой;
• обработка всей столовой посуды и приборов дезинфицирующими средствами в соответствии с инструкциями по их применению;
• ополаскивание посуды в металлической сетке с ручками в третьей секции ванны проточной водой с помощью гибкого шланга с душевой насадкой;
• просушивание посуды на решетчатых полках, стеллажах.

При выходе из строя посудомоечной машины, отсутствии условий для соблюдения технологии ручного мытья и дезинфекции посуды, а также одноразовой столовой посуды и приборов работа организации не осуществляется.

При применении одноразовой посуды производится сбор использованной одноразовой посуды в одноразовые плотно закрываемые пластиковые пакеты, которые подвергаются дезинфекции в конце рабочего дня.

Для дезинфекции могут быть использованы средства из различных химических групп: хлорактивные (натриевая соль дихлоризоциануровой кислоты — в концентрации активного хлора в рабочем растворе не менее 0,06%, хлорамин Б — в концентрации активного хлора в рабочем растворе не менее 3,0%), кислородактивные (перекись водорода — в концентрации не менее 3,0%), катионные поверхностно-активные вещества (КЛАВ)- четвертичные аммониевые соединения (в концентрации в рабочем растворе не менее 0,5%), третичные амины (в концентрации в рабочем растворе не менее 0,05%), полимерные производные гуанидина (в концентрации в рабочем растворе не менее 0,2%), спирты (в качестве кожных антисептиков и дезинфицирующих средств для обработки небольших по площади поверхностей — изопропиловый спирт в концентрации не менее 70%) по массе, этиловый спирт в концентрации не менее 75% по массе). Содержание действующих веществ указано в Инструкциях по применению.

Дезинфицирующие средства хранят в упаковках изготовителя, плотно закрытыми в специально отведенном сухом, прохладном и затемненном месте, недоступном для детей. Меры предосторожности при проведении дезинфекционных мероприятий и первой помощи при случайном отравлении изложены для каждого конкретного дезинфицирующего средства в Инструкциях по их применению.

В случае выявления заболевших после удаления больного и освобождения помещений от людей проводится заключительная дезинфекция силами специализированных организаций. Для обработки используют наиболее надежные дезинфицирующие средства на основе хлорактивных и кислородактивных соединений. Обеззараживанию подлежат все поверхности, оборудование и инвентарь производственных помещений, обеденных залов, санузлов. Посуду больного, загрязненную остатками пищи, дезинфицируют путем погружения в дезинфицирующий раствор и далее обрабатывают по изложенной выше схеме. При обработке поверхностей применяют способ орошения. Воздух в отсутствие людей рекомендуется обрабатывать с использованием открытых переносных ультрафиолетовых облучателей, аэрозолей дезинфицирующих средств.

Журнал приготовления дезинфицирующих растворов образец

Большой ассортимент дезинфицирующих средств. Ручной способ замачивание погружением в дезинфицирующем растворе, промывание с. В отделении для приготовления дезинфицирующих растворов необходимо вывесить инструкции по. Журнал учета приготовления дезинфицирующих растворов. Для приготовления рабочих дезинфицируЮЩих растворов, а также проводят. Миродез базик таблица приготовления рабочих растворов Инструкция 1108 по применению дезинфицирующего средства МИРОДЕЗ универ дезинфекции. Дезинфекция 15 вопрос, теоретического материала лабораторного занятия и манипуляциям 6 Приготовление растворов дезинфицирующих средств. Журнал контроля концентраций рабочих растворов дезинфицирующих и стерилизующих средств предназначен для регистрации. БЛАНК, ЖУРНАЛ СКАЧАТЬ БЕСПЛАТНО макет, форма, образец, документ В первую очередь, это быстрое испарение. Образец и пример заполнения Журнала контроля концентрации рабочих растворов дезинфицирующих. Журнал учета получения, расхода дезинфицирующих средств и проведения. Журнал регистрации приготовления дезинфицирующих растворов. Журнал учета приготовления растворов дезинфицирующих средств В4Жр29. Методические указания по приготовлению дезинфицирующим растворов. Допускается совместное хранение уборочного инвентаря и приготовление моющих и дезинфицирующих растворов. Вся экипировка предназначена именно для приготовления рабочих растворов из. Приготовление растворов дезинфицирующих средств. Правила приготовления дезинфицирующих растворов средства. Устранение ошибки Приготовление рабочего раствора дезинфицирующего средства только на основании установленным образом утвержденной инструкции по. Техника приготовления дезинфицирующих растворов. Приготовление дезинфицирующих растворов в домашних условиях K Книга журнал учета и контроля дез. Журналы ЖУРНАЛ разведения дезинфицирующих растворов. Противопоказания индивидуальная непереносимость дезинфицирующего средства. Как готовить и хранить рабочие растворы дезинфицирующих средств. ЖУРНАЛ УЧЕТА ПРОВЕДЕНИЯ ГЕНЕРАЛЬНОЙ УБОРКИна

ЖУРНАЛ контроля концентраций рабочих растворов дезинфицирующих средств в наименование отделения, учреждения. АЛГОРИТМЫ ПРИГОТОВЛЕНИЯ ДЕЗИНФИЦИРУЮЩИХ РАСТВОРОВ. Журнал контроля концентрации рабочих растворов дезинфицирующих и стерилизующих средств[

Журнал приготовления дезинфицирующих растворов образец — Назрановский аграрный техникум

Приготовление раствора раствора проводилось так же, как в примере 1. Правила приготовления дезинфицирующих растворов, дезинфекции, гигиенического поведения носителей тифозной палочки. Журнал для записи проведения уборок и кварцевания. Журнал приготовления рабочих растворов моющих и дезинфицирующих. Почему нельзя Концентрация средства обеззараживания для обработки различных. Журнал приготовления дезинфицирующих растворов. В помещении для приготовления дезинфицирующих растворов должна быть. A дезинфицирующий раствор и масло для смазки поступают под давлением в фиксированный в приборе наконечник рис. По данной инструкции работающие на приготовлении дезинфицирующих растворов. Приготовление дезинфицирующих растворов различной концентрации. Комната централизованного приготовления дезинфицирующих растворов оборудуется приточновытяжной. Приготовление моющих и дезинфицирующих растворов 8. Дезинфекция 15 вопрос, теоретического материала лабораторного занятия и манипуляциям 6 Приготовление растворов дезинфицирующих средств. Документация журнал приготовления 10ного раствора. Приготовить дезинфицирующий раствор и продезинфицировать шприцы и иглы. Проведение расчета потребности объекта в дезинфицирующих средствах, ведение журнала учета дезсредств на объекте является составной частью. Методика приготовления дезинфицирующих растворов. Халат, маска, резиновые перчатки, фартук, сосуды соответствующей вместимости стеклянная, эмалевая. Правила приготовления дезинфицирующих хлорсодержащих рабочих растворов. Приготовление моющих и дезинфицирующих растворов разной концентрации.Методические указания по приготовлению дезинфицирующим растворов. Для приготовления химического дезинфектора необходимо обзавестись медицинским спиртом. Приготовление дезинфицирующих растворов хлорная известь. Алгоритм приготовления дезинфицирующих растворов включает в себя и все доступные меры предосторожности от попадания. Журнал разведения дезинфицирующих средств ведется во всех медицинских учреждениях. Для приготовления рабочих дезинфицирующих растворов, а также ополаскивания необходимо использовать воду, соответствующую требованиям СанПиН 2. Приготовление растворов дезинфицирующих средств. Для контроля соблюдения качества приготовления растворов дезинфицирующих средств и качества проведения дезинфекции поверхностей применяют. В колбу вместимостью 250 мл внося т пипеткой 22мл 0, 0150, 3 по активному хлору анализируемого дезинфицирующего раствора. Для приготовления рабочего раствора дезинфектанта необходимо Сочетаемость моющих и. Существует два способа приготовления рабочих растворов дезинфицирующих. Результаты инструктажа заносятся в Журнал регистрации инструктажей по. ЖУРНАЛ контроля концентраций рабочих растворов дезинфицирующих средств в. Графа 4 указывается дата приготовления и объем рабочего. Приготовление и использование дезинфицирующих растворов различной концентрации в соответствии с. Дезинфицирующие растворы готовят в санитарных комнатах имеющих хорошую вытяжку. Упаковку, приготовление рабочих растворов, приманок и других форм применения, импрегнацию одежды. Журнал контроля концентраций рабочих растворов дезинфицирующих и стерилизующих средств предназначен для регистрации. Как готовить и хранить рабочие растворы дезинфицирующих средств. Инструкция Как работать с методическими пособиями для приготовления рабочих растворов дезинфицирующих средств по МДК04. О проведении инструктажа делают отметки с соответствующем журнале. Приготовление исходного раствора смешать в сухой посуде порошок А амидопирин большая упаковка и. Результаты контроля отражают в журнале по форме 366у. Журнал учета приготовления растворов дезинфицирующих средств В4Жр29. Показатель расхода готового раствора реактива в расчете на 1 кв. Дезинфицирующие вещества это химические вещества элементы и соединения, которые обладают способностью убивать. Приказ Министерства здравоохранения Республики Беларусь от 25. Берут образцы стерилизовавшегося материала и сеют на питательные Среды, не нашли микробов значит. Вносим запись в журнал приготовления дезрастворов. Вся экипировка предназначена именно для приготовления рабочих растворов из. ЖУРНАЛ контроля концентраций рабочих растворов дезинфицирующих средств в наименование отделения, учреждения. Документацию журнал приготовления 10 раствора хлорной извести, журнал контроля сухого. Журнал контроля концентраций рабочих растворов дезинфицирующих и стерилизующих средств, образец заполнения. Должность лица, ответственного за учет дезинфицирующих средств подпись Руководитель Ф. Журнал учета получения, расхода дезинфицирующих средств и проведения дезинфекционных. Посмотреть другие формы и образцы. Инструкция по технике безопасности при работе работе с дезинфицирующими растворами, известковыми растворами. Журнал разведения дезинфицирующих средств образец журнал учета разведения дезинфицирующих средств образец журнал приготовления дезинфицирующих. Манипуляция 1 Приготовление дезинфицирующих растворов. Журнале контроля концентраций рабочих растворов дезинфицирующих и. Приготовление раствора уксусная кислота 5 г, хлорид натрия 1 г, вода дистиллированная до 100 мл. Структура журнала учета дезинфицирующих средств. Выше было рассказано о различных способах дезинфекции. Приготовление рабочих растворов, приманок и остальных. Дата приготовления и объем рабочего. Журнал регистрации и контроля бактерицидной установки. ЖУРНАЛ разведения дезинфицирующих растворов. Документацию журнал приготовления 10 раствора хлорной извести, журнал контроля сухого препарата по. Инструкция По Приготовлению Дезинфицирующих Растворов Для Уборки Помещений. Образец и пример заполнения Журнала контроля концентрации рабочих растворов дезинфицирующих. Графы для заполнения Журнала контроля концентраций рабочих растворов дезинфицирующих и. Или швабру, чтобы вымыть стены одним из растворов дезинфицирующих средств, указанных в таблице 2. Методика приготовления растворов, экспозиция инструментов. Медицина Инструкция по приготовлению дезинфицирующих растворов. Аббревиатура журналы учта и формы регистрации журнал прибывших в ЛПУ журнал приготовления дезинфицирующих и моющих растворов для. В качестве готовой лекарственной формы он продается в виде таблеток и спиртовых растворов, а аптеки, занимающиеся приготовлением лекарств, смогут. Cкачать образец документа Журнал дезинфекции. Техника приготовления дезинфицирующих растворов. ЖУРНАЛ УЧЕТА ПРОВЕДЕНИЯ ГЕНЕРАЛЬНОЙ УБОРКИна. Для приготовления рабочих дезинфицируЮЩих растворов, а также проводят. Форма журнала приготовления растворов реактивов. Они промываются с использованием дезинфицирующего раствора. Журнал контроля концентраций рабочих растворов дезинфицирующих и стерилизующих средств, образец. Допускается совместное хранение уборочного инвентаря и приготовление моющих и дезинфицирующих растворов. Оформление журнала учета дезинфицирующих средств. Сначала указывается название дезинфицирующего раствора, затем вносят. Для приготовления дезинфицировающего раствора для обработки поверхностей на 350гр воду берут 70гр порошка. Алгоритм приготовления дезинфицирующих растворов включает в себя и все доступные меры от попадания препаратов на. Журнал регистрации приготовления дезинфицирующих растворов. Правило, приготовление дезинфицирующих растворов концентрация зависит от специфических. Устранение ошибки Приготовление рабочего раствора дезинфицирующего средства только на основании установленным образом утвержденной инструкции по. Дезинфицирующее средство имеет паспорт и инструкцию по применению. У нас Вы можете быстро и выгодно купить скачать бланк Журнал регистрации приготовления дезинфицирующих растворов, Журнал приготовления дезинфицирующих. Дата приготовления и объем рабочего раствора, графа 5 и 6. Журнал приготовления дезинфицирующих растворов образец. Журнал контроля концентрации рабочих растворов дезинфицирующих и стерилизующих средств. Пример приготовления рабочего раствора препарата. Промышленности Приготовления рабочих дезинфицирующих. Жженую известь гасят равным по объему или половинным по весу количеством воды

Режимов при уборке, обработке столовой и кухонной посуды несоблюдение условий приготовления, использования и хранения дезинфицирующих растворов. Журнал учета вводного инструктажа персонала, привлекаемого к уборке помещений и. Противопоказания индивидуальная непереносимость дезинфицирующего средства. Позволяет вести учет даты проведения контроля и даты приготовления рабочего раствора. Количество рабочего раствора дезсредства для однократной. Мкости для приготовления дезинфицирующих растворов должны быть стеклянными, эмалированными без. В качестве дезинфицирующих растворов чаще всего используют хлорную известь и хлорамин. Для приготовления основного 10 раствора хлорной извести берется 1 кг сухой хлорной извести на 10 литров воды, раствор готовят в следующей. Приготовление моющих и дезинфицирующих растворов разной концентрации является навыком, владение которым необходимо медицинскому персоналу любой. Для приготовления водных растворов ГК. Условия выполнения стационарные, санаторнокурортные. Если кто знает, подскажите где можно найти примерную форму журнала учета приготовления и использования дезрастворов или СанПин или ГОСТ где о нем. Правила приготовления дезинфицирующих растворов. Расход компонентов и результаты анализов фиксируются в журнале Приготовление и выдача дезинфицирующих растворов. Формы бланков, журналов Журналы ЖУРНАЛ разведения дезинфицирующих растворов. Журнал учета приготовления растворов дезинфицирующих средств. Мы поможем быстро получить готовые страницы для Журнала учета дезинфицирующих средств. Для приготовления дезинфицирующих растворов и хранят в упаковке производителя, в. Вы можете прикрепить файл с образцом нужного журнала. Приготовление и использование традиционных хлорсодержащих дезинфицирующих растворов. Журнал учета поступления и расходования дезинфицирующих. В журнале указывается плановая дата и время проведения, фактические данные, кто проводил уборку, какое моющее средство использовалось, дезинфицирующий. Поэтому если вы растворите пузырек аптечного йода в 25 л воды, то получите прекрасный дезинфицирующий раствор, способный убить любую опасную для пива. Журнал учета расходования дезинфицирующих средств. Извести маточный, поставить дату приготовления отметить в журнале учета, поставить свою подпись. В том случае, если игрушка может быть обработана раствором дезинфицирующего средства, но ее. Уборка помещения сложный процесс, маркировка инвентаря обязательное правило, приготовление дезинфицирующих растворов. Журнал учета получения, расхода дезинфицирующих средств и проведения.

Руководство по тестированию химических дезинфицирующих средств на предмет их вирулицидной активности в области медицины

Приложение A

Информация для проведения тестов на инфекционность

Инфекционность суспензий и их разведений может быть определена в чашках с помощью микроанализов. Для определения титра может применяться метод конечного разведения (TCID ₅₀ ) (микро- и макроанализ) или анализ налета (микроанализ).

Микроанализ в планшетах

Пример: пипетка 0.05–0,15 мл соответствующего разведения образца на лунку 96-луночного планшета для культивирования клеток (от 6 до 8 лунок на уровень разведения). Разведения образцов можно наносить на прилипшие клетки или добавлять к 0,05–0,15 мл клеточной суспензии. Если используются прилипшие культуры клеток, культуральную среду заменяют по истечении времени абсорбции 1-2 часа. Культуры клеток инкубируют при 37 ° C (обычно в течение 5–15 дней), а затем оценивают цитопатические эффекты под инверсным световым микроскопом. Инфекционность образцов рассчитывается как TCID ₅₀ / мл.

Приложение B

Контрольные значения коэффициентов восстановления с использованием нескольких контрольных веществ и вирусов (таблица B.1).

Таблица B.1 Контрольные значения коэффициентов снижения с использованием нескольких эталонных веществ и вирусов

Приложение C

Определение химических веществ

a) Количественное определение формальдегида

Концентрации формальдегида в растворах формальдегида, доступных на рынке, обычно различаются и могут также зависят от условий хранения.Таким образом, важно провести количественное определение концентрации формальдегида или его разбавления, используемого в контрольном тесте. Следует учитывать, что растворы формальдегида, приготовленные из концентрированных растворов формальдегида (например, формалина), содержат полимеры и проявляют максимальную эффективность через несколько дней при комнатной температуре.

Количественное определение формальдегида, например, с помощью хлорида гидроксиламмония:

Принцип метода следующий:

Формальдегид реагирует с хлоридом гидроксиламмония с образованием соответствующего оксима.{-} + \ mathrm {H} _ {2} \ mathrm {O} $$

Значение pH титруется гидроксидом натрия до его прежнего значения. Количество используемого гидроксида натрия указывает на концентрацию образца.

Проведение определения:

Аликвоту исследуемой пробы, содержащую от 100 до 150 мг формальдегида, переносят пипеткой в ​​емкость, подходящую для титрования на pH-метре, и добавляют дистиллированную воду прибл. 100 мл. Раствор калибруется на pH-метре точно до pH 3.0 с прибл. 0,5 н. Соляная кислота. 25 мл прибл. Добавляют 0,5 н. Раствор гидроксиламмонийхлорида, pH которого предварительно откалиброван до 3,0, и смесь инкубируют при комнатной температуре в течение 10 мин. Затем раствор снова титруют до pH 3,0 0,5 н. Гидроксидом натрия на pH-метре.

Расчет концентрации формальдегида в образце:

$$ \ frac {\ begin {array} {c} \ text {Потребляемое количество 0,5} \, \ text {N NaOH} \\ \ text {в мл} \ times 30.03 \ end {array}} {\ text {Объем образца в мл} \ times 20} = \ text {концентрация формальдегида в образце на грамм в} 100 \, \ mathrm {ml}.$$

б) Титрование ПАК

Перуксусные кислоты — это равновесные системы, состоящие из следующих компонентов:

Перуксусная кислота, пероксид водорода, уксусная кислота и вода.

Перуксусная кислота хранится при 4 ° C.

Исходный раствор перуксусной кислоты готовят с использованием раствора перуксусной кислоты с концентрацией приблизительно 40%. Срок годности основного раствора составляет не более одного дня при температуре 4 ° C.

Таким образом, определение концентрации PAA титрованием выполняется максимум за день до теста.

Вещества :

• Перуксусная кислота

• ортофосфорная кислота 85% р. Марка А.

• Калий йодид р. А. сорт.

• 1% раствор крахмала — крахмал стр. А. марка

• Гептамолибдат-тетрагидрат аммония р. Марка А.

• 0,1 н. Раствор тиосульфата натрия

• Бидест. вода, ледяные хлопья

Приготовление раствора крахмала:

1 г крахмала разводят в 100 мл воды, доводят до кипения и дают остыть.

(срок хранения не более 4 недель).

Для титрования обязательно разбавьте по крайней мере 100 мл ледяной воды. При недостаточном разбавлении перекись водорода реагирует с йодом уже в холодных условиях.

Процедура :

1. 1.

   Определение концентрации ПАК

10 мл 5% ортофосфорной кислоты и прибл. 0,5 г йодида калия добавляют к 100 мл ледяной воды и хорошо перемешивают, затем добавляют 3–4 капли раствора крахмала.

После добавления исходного раствора ^{Footnote 10} образец немедленно и быстро титруют раствором тиосульфата натрия при перемешивании до исчезновения синего цвета. Первоначальное исчезновение цвета имеет решающее значение; через короткое время раствор снова становится синим, поскольку H ₂ O ₂ начинает реагировать с иодидом.

Расчет :

$$ \ frac {\ mathrm {ml} 0.1 \, \ mathrm {N} \ mathrm {Na} _ {2} \ mathrm {S} _ {2} \ mathrm {O} _ {3} \ times 3.803} {10 \ times \ text {мл образца}} = \% \ text {перуксусная кислота} $$

Израсходованное количество раствора тиосульфата натрия концентрация перуксусной кислоты 1 мл 0,1 н. Раствор тиосульфата натрия 3,803 мг перуксусной кислоты.

1. 2.

   Определение концентрации перекиси водорода

Добавляют кончик шпателя гептамолибдата аммония и раствор нагревают до комнатной температуры, затем титруют раствором тиосульфата натрия до видимого обесцвечивания.

Расчет :

$$ \ frac {\ mathrm {ml} 0.1 \, \ mathrm {N} \ mathrm {Na} _ {2} \ mathrm {S} _ {2} \ mathrm {O} _ {3} \ times 1.701} {10 \ times \ text {ml sample}} = \% \ mathrm {H} _ {2} \ mathrm {O} _ {2} $$

Израсходованное количество раствора тиосульфата натрия≙ концентрация H ₂ O ₂ .

1 мл 0,1 н. Раствора тиосульфата натрия 1,701 мг H ₂ O ₂ .

Приложение D

Подготовка воды стандартной жесткости (WSH)

Требуются два раствора:

Раствор A:

Растворение 19.84 г безводного хлорида магния (MgCl ₂ ) и 46,24 г безводного хлорида кальция (CaCl ₂ ) в бидистиллированной воде и доливают до 1000 мл (также могут использоваться эквивалентные количества водных солей). Стерилизуйте раствор в паровом стерилизаторе. Раствор можно хранить при 2–8 ° C до одного месяца.

Раствор B:

Растворите 35,02 г бикарбоната натрия (NaHCO ₃ ) в бидистиллированной воде и залейте до 1000 мл. Стерилизуйте раствор мембранной фильтрацией.Раствор можно хранить при 2–8 ° C до одной недели.

Для приготовления 1 л воды стандартизированной жесткости не менее 600 мл стерильного бидеста. воду добавляют в стерилизованную мерную колбу на 1000 мл. Добавляют 6,0 мл раствора A и 8,0 мл раствора B, перемешивают и заполняют до 1000 мл. Раствор должен иметь pH 7,0 + 0,2. При необходимости pH калибруют с помощью 1 н. Гидроксида натрия (NaOH) или 1 н. Соляной кислоты (HCl). Вода стандартной жесткости должна быть свежеприготовленной в асептических условиях и использоваться в течение 12 часов.

Жесткость составляет 376 частей на миллион в расчете на содержание карбоната кальция.

Приложение E

Табличное и графическое отображение результатов испытаний

a) Пример табличного отображения результатов испытаний

(рис. E.1).

Рис. E.1

Пример табличного отображения результатов теста (Информация о цитотоксичности дезинфицирующего средства и о максимально обнаруживаемом снижении титра инфекционности). c.t. время контакта

б) Примеры графического изображения результатов испытаний

Приложение F

Информация по составлению экспертных заключений по тестам на дезинфицирующую активность

• Кратко опишите, в какой области применения (например,грамм. дезинфекция рук, поверхностей, инструментов или белья) средство будет использоваться во введении. Особенно важно указать, при каких условиях агент будет использоваться и почему агент считается эффективным (например, цитируя литературные ссылки, где это уместно).

• Должны быть указаны все активные ингредиенты, заданные рабочие концентрации и идентификационные данные испытуемого образца.

• Дезинфицирующее средство должно быть точно описано: номер партии, дата производства, срок годности, физические свойства, цвет, значение pH (значение pH тестовых растворов в тестируемом образце и в рабочем разведении с WSH должно быть задокументировано.Это не относится к спиртовым растворам с концентрацией> 60%).

• Должны быть описаны происхождение, подготовка и история пассажа тестового вируса, а также клеточной линии.

• Необходимо подробно описать метод испытаний и прогоны испытаний. Ссылки на руководство недостаточно. В частности, подробно опишите приготовление и, при необходимости, метод концентрирования суспензии тестируемого вируса, а также метод тестирования и расчет концентрации (титра) вируса.Любое отклонение от этого руководства должно быть подробно описано и обосновано.

• Результаты всех тестов должны быть задокументированы в таблице как необработанные данные и как рассчитанные данные TCID ₅₀ или PFU, включая 95% доверительный интервал. Также следует указать метод расчета титра. Это можно сделать, например, используя метод Спирмена-Кербера [3, 4] или для LVP формулы, используя метод Тейлора или Пуассона [5, 6].Статистическая оценка и определение 95% доверительного интервала для коэффициента снижения (RF) должны быть рассчитаны в соответствии с указаниями, приведенными в пункте 8.

Приложение G

Меморандум об использовании фильтровальных колонок с молекулярными ситами в тестах на вирулицидную активность

(по состоянию на 18 мая 2013 г.).

Для подтверждения противовирусной активности дезинфицирующих средств во время тестов дезинфицирующих средств необходимо продемонстрировать снижение титра на ≥4 log ₁₀ шагов после указанного времени контакта.Однако, поскольку некоторые дезинфицирующие средства проявляют сильную цитотоксичность, такое снижение титра не всегда может быть достигнуто. Для таких случаев EN 14476 и директива DVV / RKI рекомендуют «детоксикацию» тестируемых растворов с помощью молекулярной фильтрации, например с использованием колонок Sephadex ™ LH 20. С помощью этого метода цитотоксичность, как правило, можно снизить на один log ₁₀ шаг в зависимости от активных веществ. В некоторых лабораториях колонки для молекулярной фильтрации также используются для остановки действия нецитотоксических дезинфицирующих средств, инактивирующих вирус.Опыт нескольких лабораторий показал, что инфекционные вирусы задерживаются в этих процессах молекулярной фильтрации непредсказуемым образом, что может привести к неверным результатам. Имитируется противовирусный эффект, которого на самом деле нет.

Этот эффект наблюдался для разных видов вирусов и при использовании дезинфицирующих средств, основанных на разных активных ингредиентах. В таблице G.1 показаны различные примеры с использованием и без использования колонок для молекулярной фильтрации: составы на основе QAV 1, 3 и 4 показали значительное удержание инфекционных вирусов в колонках, тогда как в продукте 2 на основе QAV такого эффекта не наблюдалось. .При прямых сравнительных исследованиях исследуемых растворов — фильтрованных и нефильтрованных — были измерены различия в титрах до 3 log ₁₀ шагов. Однако этот эффект удержания не возникает при параллельном титровании вирусного контроля. Эти наблюдаемые эффекты приводят к гипотезе о том, что критический фактор лежит в составе исследуемых растворов, состоящих из дезинфицирующего средства, вирусной суспензии и, где это применимо, белковой нагрузки.

Несколько экспертных отчетов и публикаций содержат тесты на эффективность дезинфицирующих средств, основанные исключительно на протоколах с использованием молекулярно-ситовой фильтрации.В отдельных случаях достоверно оценить точность этих данных сложно. Это тот случай, если отсутствуют контрольные измерения, которые доказали бы, что в столбцах не осталось остаточного вируса. Поэтому мы отмечаем, что для тестов эффективности дезинфицирующих средств, в которых требуемое снижение титра не может быть достигнуто без «детоксикации», все времена контакта должны измеряться как с фильтрацией через молекулярное сито, так и без нее. При этом можно определить какое-либо удержание вирусов в столбцах.При необходимости необходимо внести другие изменения в протокол теста (например, повысить титр вируса). Молекулярная фильтрация через сито не подходит для остановки противовирусных эффектов в нецитотоксических растворах, поскольку необходимое время для этой процедуры — особенно при коротком времени воздействия — делает результаты менее точными, чем серии разведений.

Таблица G.1 Пример результатов теста со столбцами и без них

Приложение H

1. Примерный расчет титра вируса и коэффициента снижения по Спирману и Керберу

Расчет титра контрольного титрования первого прогона теста (T1):

Таблица H.1 Примерные значения для результата теста

Титр рассчитывается согласно числовым значениям, приведенным в таблице H.1 (см. Пункт 8.1):

$$ \ mathrm {m} = — 6 + 1 / 2-1 \ times 2,38 = 7,88 $$

С учетом применяемого тестового объема титр составляет 8,88 log ₁₀ TCID ₅₀ / мл. {2} \ sum \ {\ mathrm {p} _ {\ mathrm {i}} (1- \ mathrm {p} _ {\ mathrm {i}}) / (16-1) \}} \)

Как p ₁ = 1, p ₂ = 0.75, p ₃ = 0,5 и p ₄ = 0,13 и n равно 16 во всех разведениях, поэтому

$$ \ mathrm {P} _ {1} (1- \ mathrm {p} _ {1 }) / (\ mathrm {n} _ {1} -1) = 0 $$

$$ \ mathrm {p} _ {2} (1- \ mathrm {p} _ {2}) / (\ mathrm {n} _ {2} -1) = 0,75 (1-0,75) / (16-1) = 0,0125 $$

$$ \ frac {\ mathrm {p} _ {3} \ left (1- \ mathrm {p} _ {3} \ right)} {\ mathrm {n} _ {3} -1} = \ frac {0.50 \ left (1-0.50 \ right)} {16-1} = 0,0167 $$

$$ \ frac {\ mathrm {p} _ {4} \ left (1- \ mathrm {p} _ {4} \ right)} {\ mathrm {n} _ {4} -1} = \ frac {0,13 \ left (1-0.13 \ right)} {16-1} = 0,0075 $$

$$ \ mathrm {s} _ {\ mathrm {m}} = \ sqrt {1 \ left (0,0125 + 0,0167 + 0,0075 \ right)} $$

$$ \ mathrm {s} _ {\ mathrm {m}} = 0,19, $$

$$ \ mathrm {i}. \ Mathrm {e}. 2 \, \ mathrm {s} _ {\ mathrm {m}} = 0.38 $$

$$ \ text {Результат:} \, \ mathrm {k} _ {\ mathrm {a}} = 0.38 $$

Следовательно, титр контрольного титрования составляет 8,88 ± 0,38 log ₁₀ TCID ₅₀ / мл.

Если остаточный титр вируса при первом запуске теста (цифры не показаны) рассчитывается аналогичным образом, результатом для этого примера будет 3.{2}} = 0,50 $$

Таким образом, коэффициент уменьшения первого испытательного прогона составляет 5,38 ± 0,50 log ₁₀ .

Предполагая, что титры титрования вирусного контроля и титрования остаточного вируса во втором тестовом прогоне при аналогичных базовых условиях составляют 8,25 ± 0,22 log ₁₀ TCID ₅₀ / мл и 3,25 ± 0,34 log ₁₀ TCID ₅₀ / мл, RF _T2 , включая 95% доверительный интервал, рассчитывается как 5,0 ± 0,40.

Среднее RF из обоих прогонов теста, включая 95% доверительный интервал, рассчитывается согласно (см.{2} \ right) / 2} = 0,45 $$

Следовательно, общий RF от обоих прогонов теста (включая 95% доверительный интервал) для данного примера составляет 5,19 ± 0,45 log ₁₀ .

Индивидуальные титрования соответствуют требованиям руководства в отношении точности, так как 95% доверительный интервал рассчитанных титров составляет ≤0,5 log ₁₀ .

2. Пример расчета для расчета титра и коэффициента восстановления с использованием метода посева большого объема (LVP) в соответствии с п. 8.3

Предполагая, что после воздействия дезинфицирующего средства обнаруживается только низкая инфекционность, что приводит к использованию LVP, есть два варианта расчета титра b, которые можно использовать для расчета коэффициента снижения, как описано в пункте 8.2.

1. a)

   Расчет по формуле Тейлора:

Если некоторые инфицированные культуры клеток обнаружены с использованием метода LVP, титр можно рассчитать по следующей формуле:

$$ \ mathrm {c} = \ frac {\ mathrm {D}} {\ mathrm {V} _ {\ mathrm {W}}} * \ left (- \ ln \ frac {n-n_p} {n} \ right) $$

c =:

Концентрация инфекционных вирусных частиц

D =:

разведение

V _w =:

объем на скважину

n =:

количество засеянных лунок

n _p =:

количество вирус-положительных лунок

Для примера расчета используются следующие значения:

• V _w = 0.1 мл

• n = 96

• n _p = 9

• D = 1000

Если эти значения ввести в формулу выше, результат будет 984 инфекционных частицы на мл . Один TCID ₅₀ эквивалентен 0,69 инфекционным вирусным частицам. Таким образом, в результате получается титр 984: 0,69 = 1426 TCID ₅₀ на мл. Значение, используемое для расчета коэффициента уменьшения, представляет собой десятичный логарифм этого титра, т.е.е. 3,15 log ₁₀ TCID ₅₀ / мл.

1. b)

   Расчет по формуле Пуассона:

Если с помощью метода LVP не обнаружены инфицированные культуры клеток, количество инфекционных вирусных частиц (предел обнаружения 95%) определяется следующим образом:

$$ \ mathrm {c} = \ ln \ mathrm {p} / — \ mathrm {v} $$

Ключ:

p =:

— вероятность не обнаружить вирус; вероятность не обнаружения вируса не должна превышать 5% ( p = 0.05). Таким образом, рассчитывается концентрация вируса в данном объеме образца, который может быть обнаружен с вероятностью 95%.

V =:

тестовый объем [мл]

В этом примере образец разбавлен до 1: 1000, из-за цитотоксичности, вносится в микропланшет (96 лунок, 0,1 мл / лунка).

Это приводит к следующему вычислению:

• p = 0,05, ln p = −2,99

• V = 96 × 0.1 мл; исследуемый объем составляет 9,6 мл

В формулу подставлено значение ≤0,31 вирусных частиц / мл. С учетом разведения (0,31 × 1000) результат составляет 310 инфекционных вирусных частиц на мл. Поскольку один TCID ₅₀ эквивалентен 0,69 инфекционным вирусным частицам, результатом является титр 310: 0,69 = 445 TCID ₅₀ / мл, логарифм которого составляет ≤2,65 log ₁₀ TCID ₅₀ / мл. Это значение является титром, используемым для расчета коэффициента уменьшения.

Для расчета коэффициента уменьшения и его 95% доверительного интервала мы предполагаем, что титр вирусного контроля, как показано в приведенном выше примере, составляет 8,88 ± 0,38 log ₁₀ TCID ₅₀ / мл. 3,15 log ₁₀ TCID ₅₀ / мл был определен как остаточный титр вируса. Следовательно, коэффициент уменьшения составляет (8,88–3,15) 5,73 log ₁₀ .

Поскольку по прагматическим причинам титр остаточного вируса не имеет 95% доверительного интервала, результатом является коэффициент уменьшения 5.73 ± 0,38 log ₁₀ .

Если при определении остаточного титра вируса инфекционность не обнаружена и титр рассчитывается по формуле Пуассона, результатом является коэффициент уменьшения (8,88–2,65) 6,23 log ₁₀ .

Поскольку по прагматическим причинам титр остаточного вируса не имеет 95% доверительного интервала, результатом является коэффициент уменьшения ≥6,23 ± 0,38 log ₁₀ . Здесь перед коэффициентом уменьшения стоит символ ≥, чтобы продемонстрировать, что остаточная инфекционность не была обнаружена, т.е.е. коэффициент уменьшения составляет, по крайней мере, это значение, но может быть и выше.

Журнал уборки ванной комнаты — заполнить онлайн, для печати, заполняемый, пустой

Комментарии и помощь в уборке ванной комнаты

Видеоинструкция и помощь в заполнении и заполнении журнала уборки ванной комнаты

Инструкции и справка по форме журнала уборки туалета

сегодня мы собираемся продемонстрировать, как правильно очистить туалет, используя наши озеленение чистящие средства Туалет — это область, которую, возможно, придется чистить чаще, чем один раз в день, в зависимости от использования, что вам понадобится, наш липкий очиститель для унитаза, дезинфицирующий спрей для стекла Средство для мытья окон и чистящее средство для чистки окон. сначала убедитесь, что туалет пуст, затем закройте туалет, поместив табличку с мокрым полом за дверью, затем проверьте все дозаторы и, при необходимости, наполните пустые мусорные баки и с приветствием вычистите емкость и вытащите ее. чистящий спрей, дезинфицирующий для стойких пятен, затем используйте универсальный очиститель, затем используйте инструмент для удаления пыли, чтобы протереть стойло и выступы забора, вы спорт бросьте очиститель для унитаза под обод унитаза и дайте ему распылить дезинфицирующее средство на раковину унитазы приспособления писсуары и стены протрите все начисто влажной тканью или микрофиброй, если на затирке или фарфоре есть пятна от воды или плесень, используйте очищающий крем для удалить пятна потрите внутреннюю часть унитаза шваброй Johnny и сполосните сиденье для унитаза с чистящим дезинфицирующим средством и белым чистым Распылительное зеркало со стеклом для чистки и средством для мытья окон и протрите чистой сухой тканью, используя веник или шваброй для пыли подмести весь пол туалета перед тем, как мыть шваброй, используйте шпатель, удалите весь мусор или жвачку, которые могут быть на полу, затем протрите пол влажной шваброй с должным образом разбавленным чистящим концентратом. Вы можете использовать чтение универсального чистящего средства, разбавленного из расчета 2 унции на галлон. влажная швабра подрезка пола означает вытирание краев и углов пола, удерживая швабру параллельно стене врезки, важно, потому что это исключает разбрызгивание на стены и плинтусы, следы брызг необходимо стирать вручную, это также контролирует накопление грязи в края и углы вытирайте шваброй поверхность пола, используя узор в виде цифры 8, перекрывая каждый проход, держите пятку швабры на полу все время проводите осмотр ction и обратите внимание на перегоревшие светильники, капающие из кранов, для любых предметов обслуживания и сообщите о них своему руководителю.

AOAC Use Dilution Test (AOAC 955.14; 955,15; 964.02)

Метод AOAC Use Dilution — это метод проверки эффективности дезинфицирующих средств, первоначально разработанный в 1955 году. После многочисленных пересмотров он стал стандартом для оценки жидких и разбавляемых жидких дезинфицирующих средств для твердых поверхностей. В частности, этот метод определен Агентством по охране окружающей среды США как обязательный для обоснования требований о дезинфицирующих средствах.

Вкратце, метод использования разбавления выполняется путем замачивания носителей из нержавеющей стали в бактериях, обработки их дезинфицирующим средством и, наконец, помещения носителей в питательный бульон, чтобы определить, есть ли еще выжившие бактерии.Это делает метод качественным, а это означает, что результаты определяются тем, растут ли бактерии, а не подсчетом бактерий.

Одним из самых последних изменений метода, результатом нескольких лет работы представителей отрасли и Агентства по охране окружающей среды, стало снижение стандарта эффективности для Staphylococcus aureus и Pseudomonas aeruginosa , в результате чего тест прошел / не прошел. определение надежнее. Это также облегчило прохождение теста, к большому удовольствию разработчиков дезинфицирующих средств.

Наряду с изменением стандарта эффективности EPA также добавило требование о том, чтобы для некоторых микроорганизмов разные партии тестируемого продукта тестировались в разные дни.

Примечание. Информация ниже представлена ​​только в образовательных целях. Текущие подробные методы AOAC можно получить в AOAC.

Краткое описание метода тестирования и важных параметров

• 48-часовую культуру отдельных видов бактерий сушат на нескольких небольших цилиндрических испытательных поверхностях из нержавеющей стали, называемых пеницилиндрами (в просторечии называемых «носителями»).
• Если продукт будет продаваться как «одностадийный» очиститель / дезинфицирующее средство, органическая почва добавляется в культуру до начала теста.
• Носители (10, 30 или 60) замачивают в бактериальной культуре.
• Тестирование для первоначальной регистрации продукта требует тестирования с 60 носителями на микроорганизм на партию тестируемого продукта. Три партии продукта, произведенные на уровне LCL или ниже, должны быть протестированы на каждый микроорганизм.
• Тестирование «дополнительных организмов» требует тестирования с 10 носителями на микроорганизм на партию тестируемого продукта.Две партии продукта, произведенные на уровне LCL или ниже, должны быть протестированы на каждый микроорганизм.
• Просеивания не-GLP для целей НИОКР также могут быть выполнены с 10, 30 или 60 несущими.
• Носители просушены.
• Три носителя пронумерованы до начала теста для определения микробных концентраций носителя перед тестированием.
• Каждый сухой загрязненный носитель для теста по отдельности переносится в пробирку, наполненную 10 мл дезинфицирующего средства, где они инкубируются в течение указанного времени контакта.
• Время контакта, используемое в тесте, будет временем контакта, которое EPA допускает на этикетке продукта.
• По истечении времени контакта обработанные носители для теста переносятся по отдельности в пробирки, содержащие жидкий нейтрализатор / питательную среду.
• Три носителя перечисляются сразу после завершения теста для определения микробных концентраций носителей после теста.
• Обработанные тестовые поверхности инкубируют в нейтрализующей питательной среде в течение 48 часов.
• После инкубации регистрируют количество пробирок, показывающих рост целевого микроорганизма.
• Для того чтобы Salmonella enterica «прошла» тест на носитель 60, по крайней мере 59 поверхностей должны демонстрировать полную дезинфекцию для каждой протестированной партии.
• Для того чтобы Pseudomonas aeruginosa «прошел» тест на носитель 60, по крайней мере 54 поверхности должны демонстрировать полную дезинфекцию для каждой протестированной партии.
• Для того чтобы Staphylococcus aureus «прошел» тест на носитель 60, по крайней мере 57 поверхностей должны демонстрировать полную дезинфекцию для каждой протестированной партии.
• Чтобы «пройти» тест на носитель 10, необходимо провести полную дезинфекцию всех испытуемых поверхностей.

Достоинства метода испытания на разбавление, применяемого AOAC

• Испытание на разбавление, проводимое AOAC, одобрено Управлением по охране окружающей среды для представления данных вместе с регистрацией разбавляемых дезинфицирующих средств, продаваемых в США. Теперь, когда стандарт эффективности был скорректирован, метод использования-разбавления, вероятно, легче пройти для большинства продуктов, чем другой метод, который можно использовать для регистрации жидкостей в качестве дезинфицирующих средств, бактерицидные спреи AOAC в качестве дезинфицирующих средств.
• Тест AOAC Use-Dilution Test — это тест «высокого уровня» для дезинфицирующих средств, означающий, что для прохождения теста антимикробный раствор должен обладать заметной биоцидной активностью в течение относительно короткого периода времени.

Слабые стороны метода тестирования

• Метод испытания AOAC на использование-разбавление имеет некоторую внутреннюю вариативность, основанную только на статистических данных. Например, для Staphylococcus aureus продукт, который дает в среднем «удовлетворительно» 3/60, не проходит тест в некотором значительном проценте случаев.
• Тест AOAC на использование-разведение подвержен дополнительным отклонениям, связанным с неоднозначностью официального метода. Например, в официальном методе испытаний не рассматриваются важные параметры, такие как уровень влажности во время сушки носителей.
• Тест AOAC на использование-разбавление далек от «реального» использования дезинфицирующих средств. Наиболее явным отличием от использования продукта в «реальной жизни» является то, что загрязненные поверхности погружены в избыток дезинфицирующего средства на все время контакта (до 10 минут).
• Во избежание ложноположительных результатов ученый, выполняющий тест на разбавление, должен иметь опыт и навыки обращения с проволочными крючками в условиях значительного временного давления и должен уметь переносить загрязненные пеницилиндры между пробирками, не касаясь сторон пробирки. пробирки или загрязнение тест-системы другими способами.

Лаборатория Microchem потратила много времени и усилий на то, чтобы усовершенствовать методику проведения испытаний на разбавление методом AOAC.Мы принимаем множество мер, чтобы уменьшить вариабельность между тестами, успешно отправили данные в EPA для регистрации проекта и готовы ответить на вопросы, которые могут возникнуть у наших клиентов в отношении этого теста.

Если вы заинтересованы в организации исследования с лабораторией, просто свяжитесь с нами или запросите ценовое предложение.

Рекомендации | Рекомендации по дезинфекции и стерилизации | Библиотека руководств | Инфекционный контроль

Пояснение: CDC и HICPAC имеют рекомендации как в Руководстве по контролю за инфекциями окружающей среды в медицинских учреждениях , 2003 г., так и в Руководстве 2008 года по дезинфекции и стерилизации в медицинских учреждениях , в которых говорится, что CDC не поддерживает запотевание дезинфицирующим средством.В частности, в Руководящих принципах 2003 и 2008 гг .:

• 2003: «Не выполняйте дезинфекцию туманом в обычных целях в зонах ухода за пациентами. Категория IB »
• 2008: «Не выполняйте распыление дезинфицирующего средства в зонах ухода за пациентами. Категория II »

Эти рекомендации касаются распыления или распыления химикатов (например, формальдегида, веществ на основе фенола или соединений четвертичного аммония) как способа обеззараживания поверхностей окружающей среды или дезинфекции воздуха в палатах.Рекомендация против запотевания была основана на исследованиях 1970-х годов, в которых сообщалось об отсутствии микробицидной эффективности (например, использование соединений четвертичного аммония при нанесении тумана), но также о неблагоприятном воздействии на медицинских работников и других лиц в учреждениях, где использовались эти методы. Кроме того, некоторые из этих химикатов не зарегистрированы Агентством по охране окружающей среды для использования в системах туманообразования.

Эти рекомендации не применяются к более новым технологиям, включающим туманообразование для дезактивации помещений (например,g., озоновый туман, испаренная перекись водорода), которые стали доступными после рекомендаций 2003 и 2008 годов. Эти новые технологии были оценены CDC и HICPAC в Руководстве по профилактике и борьбе со вспышками норовирусного гастроэнтерита в медицинских учреждениях 2011 г., в котором содержится рекомендация:

«Требуются дополнительные исследования для выяснения эффективности и надежности туманообразования, УФ-излучения и озонового тумана для уменьшения загрязнения окружающей среды норовирусами.(Нет рекомендаций / нерешенный вопрос) »

Рекомендации 2003 и 2008 годов все еще применяются; однако CDC еще не дает рекомендаций относительно этих новых технологий. Этот вопрос будет рассмотрен еще раз, когда появятся дополнительные доказательства.

Дезинфицирующие средства на основе перекиси водорода и гипохлорита натрия более эффективны против биопленок Staphylococcus aureus и Pseudomonas aeruginosa, чем соединения четвертичного аммония | Устойчивость к противомикробным препаратам и инфекционный контроль

1.

Центр контроля заболеваний. Отчет о прогрессе в области здравоохранения, связанного с инфекциями. CDC. 2014. https://www.cdc.gov/hai/surveillance/progress-report/index.html. Опубликовано в 2016 г. По состоянию на 5 июля 2018 г.

2.

Валлес Дж., Феррер Р. Инфекция кровотока в отделении интенсивной терапии. Заражение Dis Clin N Am. 2009. 23: 557–69.

Артикул Google Scholar

3.

Stone PW. Экономическое бремя инфекций, связанных с оказанием медицинской помощи: американская перспектива.Эксперт Rev Pharmacoecon Outcomes Res. 2009. 9 (5): 417–22.

PubMed PubMed Central Статья Google Scholar

4.

Джамал М., Ахмад В., Андлиб С., Джалил Ф., Имран М., Наваз М.А., Хуссейн Т., Али М., Рафик М., Камил М.А. Биопленки бактерий и ассоциированные инфекции. J Chin Med Assoc. 2017; 81 (1): 7–11.

PubMed Статья Google Scholar

5.

Викери К., Дева А., Джакомбс А., Аллан Дж., Валенте П., Госбелл И.Б.Наличие биопленки, содержащей жизнеспособные мультирезистентные организмы, несмотря на окончательную очистку клинических поверхностей в отделении интенсивной терапии. J Hosp Infect. 2012; 80 (1): 52–5.

CAS PubMed Статья Google Scholar

6.

Rutala WA, Weber DJ. Дезинфекция, стерилизация и контроль медицинских отходов. В принципах и практике инфекционных заболеваний Манделла, Дугласа и Беннета. Vol. 2. Elsevier Inc., 2014. стр. 3294–3309.e1; https://doi.org/10.1016/B978-1-4557-4801-3.00301-5.

7.

Quinn MM, Henneberger PK, Национальный институт профессиональной безопасности и здоровья (NIOSH), Национальная программа профессиональных исследований (NORA), очистка и дезинфекция в рабочей группе здравоохранения, Braun B, Delclos GL, Fagan K, Huang V, Knaack JL, Kusek L, Lee SJ, Le Moual N, Maher KA, SH MC, Mitchell AH, Pechter E, Rosenman K, Sehulster L, Stephens AC, Wilburn S, Zock JP. Очистка и дезинфекция поверхностей окружающей среды в здравоохранении: к интегрированной системе профилактики инфекций и профессиональных заболеваний.Am J Infect Control. 2015; 43 (5): 424–34.

PubMed Статья Google Scholar

8.

Смит К., Хантер И.С. Эффективность обычных больничных биоцидов с биопленками клинических изолятов с множественной лекарственной устойчивостью. J Med Microbiol. 2008; 57: 966–73.

CAS PubMed Статья Google Scholar

9.

Дантес Р., Мю И, Белфлауэр Р., Арагон Д., Думяти Дж., Харрисон Л. Х., Лесса ФК, Линфилд Р., Надл Дж., Пети С., Рэй С. М., Шаффнер В., Таунс Дж., Фридкин С.Программа по возникающим инфекциям — активный бактериальный эпиднадзор Исследователи эпиднадзора за MRSA. Национальное бремя инвазивных метициллин-резистентных инфекций Staphylococcus aureus, США, 2011 г. JAMA Intern Med. 2013; 173: 1970–8.

PubMed Google Scholar

10.

Лю Дж, Ло З, Лю К., Чжан И, Пэн Х, Ху Би, Рен Х, Чжоу Х, Цю С., Хе Х, Е П, Бастани Х, Лу Л. Флашинг о отряде биопленки, прикрепленные к стенкам металлических труб в системах водоснабжения.Дж. Чжэцзян Univ-Sci A. 2017; 18: 313–28.

CAS Статья Google Scholar

11.

Крамер А., Швебке И., Кампф Г. Как долго внутрибольничные патогены сохраняются на неодушевленных поверхностях? Системный обзор. BMC Infect Dis. 2006; 6: 130.

PubMed PubMed Central Статья Google Scholar

12.

Персиваль С., Каттинг К., Томас Дж., Уильямс Д. Введение в мир микробиологии и биофильмологии.В: Персиваль С., Каттинг К., редакторы. Микробиология ран. Бока-Ратон: CRC Press; 2010.

Google Scholar

13.

Абдалла М., Хелисса О., Ибрагим А., Бенолиэль С., Хелиот Л., Дхулстер П., Чихиб, NE. Влияние температуры роста и типа поверхности на устойчивость биопленок Pseudomonas aeruginosa и Staphylococcus aureus к дезинфицирующим средствам. Int J Food Microbiol. 2015; 214: 38–47.

CAS PubMed Статья Google Scholar

14.

Бридье А., Бриандет Р., Томас В., Дюбуа-Бриссонне Ф. Устойчивость бактериальных биопленок к дезинфицирующим средствам: обзор. Биообрастание. 2011; 27: 1017–32.

CAS PubMed Статья Google Scholar

15.

Buckingham-Meyer K, Goeres DM, Hamilton MA. Сравнительная оценка тестов эффективности дезинфицирующих средств для биопленок. J Microbiol Methods. 2007; 70: 236–44.

CAS PubMed Статья Google Scholar

16.

Дэвисон ВМ, Питтс Б., Стюарт ПС. Пространственные и временные закономерности биоцидного действия против Staphylococcus epidermidis биопленок. Противомикробные агенты Chemother. 2010; 54: 2920–7.

CAS PubMed PubMed Central Статья Google Scholar

17.

Fagerlund A, Møretrø T, Heir E, Briandet R, Langsrud S. Очистка и дезинфекция биопленок, состоящих из Listeria monocytogenes и фоновой микробиоты с поверхностей мясопереработки.Appl Environ Microbiol. 2017. https://doi.org/10.1128/AEM.01046-17.

18.

Донлан РМ. Биопленки: микробная жизнь на поверхностях. Emerg Infect Dis. 2002; 8: 881–90.

PubMed PubMed Central Статья Google Scholar

19.

Мейер Б., Куксон Б. Создает ли устойчивость микробов или адаптация к биоцидам опасность в профилактике инфекций и борьбе с ними? J Hosp Infect. 2010. 76: 200–5.

CAS PubMed Статья Google Scholar

20.

Агентство по охране окружающей среды. Методы и руководство по тестированию эффективности противомикробных препаратов против биопленок на твердых, непористых поверхностях. EPA. 2017. https://www.epa.gov/pesticide-analytical-methods/methods-and-guidance-testing-efficacy-antimicrobial-products-against#efficacy-data. По состоянию на 2 ноября 2018 г.

21.

Hong Y, Teska PJ, Oliver HF. Влияние времени контакта и концентрации на бактерицидную эффективность 3 дезинфицирующих средств на твердых непористых поверхностях. Am J Infect Control.2017. https://doi.org/10.1016/j.ajic.2017.04.015.

22.

West AM, Teska PJ, Oliver HF. Нет дополнительной бактерицидной эффективности дезинфицирующих салфеток, зарегистрированных EPA, после высыхания поверхности или по истечении времени контакта с этикеткой. Am J Infect Control. 2018; 7: 122. https://doi.org/10.1016/j.ajic.2018.07.005.

23.

Ледвоч К., Танцовщица С.Дж., Оттер Дж. А., Керр К., Ропост Д., Раштон Л., Вайзер Р., Махентиралингам Е., Мьюир Д. Д., Майлард Дж. Остерегайтесь биопленок! Сухие биопленки, содержащие бактериальные патогены, на нескольких медицинских поверхностях; многоцентровое исследование.J Hosp Infect. 2018; 100: e47–56.

CAS PubMed Статья Google Scholar

24.

Агентство по охране окружающей среды. Стандарты тестирования эффективности для данных о продукте требуют ответа. EPA; 2015. https://www.epa.gov/sites/production/files/2017-05/documents/reregistration_efficacy_standards.pdf. По состоянию на 1 августа 2018 г.

25.

МакБейн А.Дж., Леддер Р.Г., Мур Л.Е., Катренич С.Е., Гилберт П. Влияние составов на основе четвертичного аммония на динамику бактериального сообщества и чувствительность к антимикробным препаратам.Appl Environ Microbiol. 2004. 70 (6): 3449–56.

CAS PubMed PubMed Central Статья Google Scholar

26.

Герба CP. Биоциды четвертичного аммония: эффективность применения. 2015. Appl Environ Microbiol. 2015; 81 (2): 464–9.

PubMed PubMed Central Статья Google Scholar

27.

Насиудис А., Джойс В.Ф., Ван Велде Дж.В., Херен RMA, Ван ден Бринк, О.Ф.Формирование ионов с низким зарядовым состоянием синтетических полимеров с использованием соединений четвертичного аммония. Anal Chem. 2010; 82: 5735–42.

CAS PubMed Статья Google Scholar

28.

Велпандиан Т., Джаябалан Н., Арора Б., Рави А.К., Котнала А. Понимание проблем заряда в моно- и двчетвертичных аммониевых соединениях для их определения с помощью ЖХ / ESI-MS / MS. Anal Lett. 2012. 45 (16): 2367–76.

CAS Статья Google Scholar

29.

Ценг Б.С., Чжан В., Харрисон Дж. Дж., Квач Т. П., Сонг Дж. Л., Пентерман Дж., Сингх П. К., Чопп Д. Л., Пакман А. И., Парсек МР. Внеклеточный матрикс защищает биопленки Pseudomonas aeruginosa , ограничивая проникновение тобрамицина. Environ Microbiol. 2013; 15: 2865–78.

CAS PubMed PubMed Central Google Scholar

30.

Тезел У, Спирос ГП. Дезинфицирующие средства на основе четвертичного аммония: микробная адаптация, деградация и экология.Environ Biotech. 2015; 33: 296–304 https://doi.org/10.1016/j.copbio.2015.03.018.

CAS Google Scholar

31.

DeQueiroz GA, Day DF. Противомикробная активность и эффективность комбинации гипохлорита натрия и перекиси водорода при уничтожении и удалении биопленок Pseudomonas aeruginosa с поверхностей. J Appl Microbiol. 2007. https://doi.org/10.1111/j.1365-2672.2007.03299.x.

32.

Tiwari S, Rajak S, Mondal DP, Biswas D.Гипохлорит натрия более эффективен, чем 70% этанол, против биопленок клинических изолятов Staphylococcus aureus . Am J Infect Control. 2018; 46: e37–42.

CAS PubMed Статья Google Scholar

33.

Barnes TM, Greive KA. Использование отбеливающих ванн для лечения инфицированной атопической экземы. Australas J Dermatol. 2013; 54: 251–8.

PubMed Статья Google Scholar

34.

Цинкарова Л., Полянский О., Бабак В., Кулич П., Кралик П. Изменения в экспрессии поверхностных белков, связанных с биопленками, в изолятах пищевых продуктов и окружающей среды Staphylococcus aureus , подвергнутых воздействию дезинфицирующих средств в сублетальных концентрациях. Biomed Res Int. 2016. https://doi.org/10.1155/2016/4034517.

35.

Boyce MJ, Guercia KA, Sullivan L, Havill NL, Fekieta R, Kozakiewicz J, Goffman D. Перспективное перекрестное исследование с кластерным контролем для сравнения воздействия улучшенного дезинфицирующего средства на основе перекиси водорода и дезинфицирующего средства на основе четвертичного аммония на поверхностное загрязнение и последствия для здоровья.Am J Infect Control. 2017; 45: 1006–10.

CAS PubMed Статья Google Scholar

36.

Омидбахш Н. Новое универсальное дезинфицирующее средство высокого уровня на основе пероксида, совместимое с эндоскопом. Am J Infect Control. 2006; 34: 571.

PubMed Статья Google Scholar

37.

Rutala WA, Weber DJ. Дезинфекция эндоскопов: обзор новых химических стерилизаторов, используемых для дезинфекции высокого уровня.Инфекционный контроль Hosp Epidemiol. 1999; 20:69.

CAS PubMed Статья Google Scholar

38.

Альфа М.Дж., Джексон М. Новое моющее средство для медицинских устройств на основе перекиси водорода с бактерицидными свойствами: сравнение с ферментативными очистителями. Am J Infect Control. 2001; 29: 168.

CAS PubMed Статья Google Scholar

39.

Mitchell KF, Zarnowski R, Sanchez H, Edward JA, Reinicke EL, Nett JE, Mitchell AP, Andes DR.Участие сообщества в сборке и функционировании матрикса биопленки. Proc Natl Acad Sci U S. A. 2015; 112: 4092–7.

CAS PubMed PubMed Central Статья Google Scholar

40.

Аль-Джайлави М., Амин Р., Аль-Джебури М.Р. Влияние дезинфицирующих средств на чувствительность к антибиотикам Pseudomonas aeruginosa . J Appl Biotechnol. 2013. https://doi.org/10.5296/jab.v1i1.4038.

41.

Гилберт П., Дас Дж. Р., Джонс М. В., Эллисон Д. Г..Оценка устойчивости к биоцидам после прикрепления микроорганизмов к поверхностям и роста на них. J Appl Microbiol. 2001; 91: 248–54.

CAS PubMed Статья Google Scholar

5 ключевых компонентов пакета тестирования эффективности дезинфицирующих средств (часть 1)

Автор Кристал М. Бут, PSC Biotech

Контроль микробного загрязнения имеет важное значение для обеспечения безопасности потребителей, особенно в контролируемой среде.Дезинфицирующие средства играют важную роль в борьбе с микробным заражением поверхностей. Термин дезинфицирующее средство часто широко используется для описания химических агентов, используемых для снижения микробной нагрузки в контролируемой среде.

Тестирование эффективности дезинфицирующих средств используется для измерения эффективности химических веществ, используемых для очистки, дезинфекции или дезинфекции поверхностей. Существует множество нормативных актов и руководящих документов, в которых обсуждается тестирование эффективности дезинфицирующих средств, а создание соответствующего пакета для тестирования эффективности дезинфицирующих средств помогает в предоставлении четкой документации о том, что дезинфицирующие средства, используемые на предприятии, были проанализированы в соответствии с требованиями этих правил.

Есть несколько важных концепций, которые следует учитывать при создании пакета тестирования эффективности дезинфицирующего средства. В этой статье, состоящей из двух частей, обсуждаются и рекомендуются пять ключевых компонентов, которые можно использовать для создания совместимого пакета тестирования эффективности дезинфицирующих средств в США. (Примечание: пакет тестирования эффективности дезинфицирующего средства является лишь одним из компонентов политики контроля загрязнения.)

Положения и концепции тестирования эффективности дезинфицирующих средств

Процедуры очистки и санитарной обработки являются важными сегментами общей стратегии контроля загрязнения на предприятии.Надлежащий контроль микробного загрязнения необходим для обеспечения безопасного и надлежащего производства продуктов и их эффективности, как задумано. Химические агенты, используемые для поддержания микробного контроля, должны быть эффективными в уничтожении микроорганизмов.

Существует множество нормативных и руководящих документов, в которых обсуждается тестирование эффективности дезинфицирующих средств (DET), включая следующие:

• PDA Technical Report 70 — Основы программ очистки и дезинфекции для асептических производственных помещений ¹
• PDA Technical Report 13 — Основы программы мониторинга окружающей среды (EM) ²
• ISO 14464-1 — Чистые помещения и связанные с ними среды ³
• USP <1072> Дезинфицирующие и антисептические средства ⁴
• U.S. Свод федеральных правил (CFR), раздел 21, часть 211.42 (c) ⁵
• Свод федеральных правил США (CFR), раздел 21, часть 211.67, разд. 211,67 ⁵
• Руководство FDA для промышленности: стерильные лекарственные препараты, произведенные путем асептической обработки — действующая надлежащая производственная практика ⁶
• EudraLex Volume 4 — EU Guidelines on Good Manufacturing Practice (GMP) for Human and Veterinary Medicinal Products, Annex 1 — Production of Sterile Medicinal Products ⁷
• EudraLex, том 4 — Руководство ЕС по надлежащей практике производства лекарственных средств для людей и ветеринарии, часть 1, глава 3: Помещения и оборудование ⁸
• EudraLex, том 4 — Руководство ЕС по надлежащей практике производства лекарственных средств для человека и ветеринарии, часть 1, глава 5: Производство ⁹

Несоблюдение этих и других нормативных руководящих документов может привести к наблюдениям.FDA размещает предупреждающие письма на своем веб-сайте, и эти предупреждающие письма можно просмотреть, чтобы получить представление о текущих нормативных ожиданиях. Затем эти знания можно использовать для предотвращения подобных открытий в будущем.

Для очистки, дезинфекции и дезинфекции доступно множество различных типов химикатов. Фармакопея США (USP) <1072> Дезинфицирующие и антисептические средства определяют и описывают некоторые из доступных на рынке химических веществ. Согласно USP <1072> следующие свойства могут влиять на эффективность дезинфицирующих средств, используемых на объекте:

• pH дезинфицирующего средства
• Концентрация дезинфицирующего средства
• Время контакта
  • При проведении испытаний важно отметить, что «время контакта» относится к времени контакта с влажным веществом.Другими словами, дезинфицируемый материал должен оставаться влажным от дезинфицирующего средства в течение утвержденного времени контакта. ² Как правило, время контакта не должно превышать 120 секунд для спиртов или 10 минут для дезинфицирующих средств и спорицидов. ¹
• Способ применения дезинфицирующего средства
  • Например, распыление, протирание, мытье полов и т. Д. ¹⁰
• Характер дезинфицированной поверхности
• Жесткость воды, используемой для разбавления дезинфицирующего средства
• Температура окружающей среды
• Количество органических материалов на очищаемой поверхности
• Почва или мусор на поверхности
• Тип и количество присутствующих микроорганизмов

Свойства, описанные в USP <1072>, наряду с информацией о нормативных и руководящих документах, следует учитывать при разработке тестов на эффективность дезинфицирующих средств и процедур очистки помещений.Некоторые дополнительные концепции, которые следует учитывать при планировании стратегии тестирования эффективности дезинфицирующего средства, включают следующее:

• Типы дезинфицирующих средств, подлежащие проверке
  • USP <1072> предоставляет список различных типов дезинфицирующих средств, обычно используемых в промышленности.
• Микробные изоляты, которые будут использоваться в исследовании
  • Регулирующие органы ожидают, что изоляты окружающей среды будут включены в исследование, когда это возможно. ⁴
  • Также укажите обоснование того, почему микроорганизмы были выбраны для использования в исследовании. ¹⁰
• Типы купонов на материалы (нержавеющая сталь, стекло, пластик и т. Д.) Для испытаний. ¹⁰
  • USP <1072> предоставляет список различных типов материалов, используемых для чистых помещений.
• Условия окружающей среды (например, воздушный поток, температура, влажность) ¹⁰
• Надлежащее обучение сотрудников
• Реалистичные критерии приемки
  • По крайней мере, уменьшение 2 log для бактериальных спор и 3 log уменьшение для вегетативных бактерий в течение заранее определенного времени контакта (т.е.е., 10 минут сверх периода восстановления, наблюдаемого при применении контрольного дезинфицирующего средства) должны быть приемлемыми. ⁴

5 компонентов пакета тестирования на эффективность дезинфицирующих средств

1. Протокол тестирования эффективности основного дезинфицирующего средства

Первым ключевым компонентом создания пакета тестирования эффективности дезинфицирующего средства, соответствующего требованиям, является исследование и планирование содержимого окончательной упаковки.С этой целью рекомендуется разработать всеобъемлющий протокол (или основной протокол DET) для исследования. Этот протокол представляет собой способ зафиксировать и задокументировать исследования, выполненные на этапе планирования, и обрисовать окончательный вид пакета DET. Этот протокол аналогичен главному протоколу проверки и описывает последующие протоколы и информацию, которые должны быть включены в пакет DET.

При рассмотрении вопросов для включения в исследование важно собрать все данные и информацию, которые потребуются.Рекомендуется, чтобы основной протокол DET включал контрольный список для следующих пунктов:

• Лист технических данных ¹¹
• Сертификат анализа (CoA) ¹¹
• Политика контроля над изменениями поставщика ¹¹
• Рекомендации по применению ¹¹
• Все доступные тесты на совместимость подложек ¹¹
• Все доступные тесты на стабильность ¹¹
• Все доступные тесты на микробную эффективность ¹¹
• Описание упаковки, этикетки и типа тары дезинфицирующего средства ¹
• Описание ингредиентов и концентраций дезинфицирующего средства ¹
• Номер партии или партии дезинфицирующего средства ¹
• Облучение или другой сертификат проверки стерилизации ¹
• Информация в паспорте безопасности ^{1, 11}
• Информация об утилизации ¹

Вышеуказанная информация должна быть систематизирована дезинфицирующим средством и включена в раздел справочной документации для облегчения поиска в будущем.

Типичный главный протокол DET будет включать следующее:

• Раздел справочных документов и контрольных списков (включая документы), как описано ранее
  • Этот раздел может также включать подразделение, организованное сотрудником для любой соответствующей учебной документации, необходимой для выполнения протоколов.
  • При желании в этот раздел могут быть включены ссылки на любые соответствующие внутренние рабочие процедуры.
• Ссылка на протокол испытаний на разведение ( in vitro, )
• Ссылка на протокол испытаний поверхности ( in vitro, )
• Ссылка на протокол для сравнительного статистического теста ( in situ )
• Установленное требование по обобщению всех данных и выводов в сводном отчете DET по завершении исследования

2.Испытания на разбавление (in vitro)

Второй ключевой компонент в создании соответствующего пакета для тестирования эффективности дезинфицирующего средства — это информация, касающаяся теста на разбавление. Тест на использование-разведение проверяет концентрации и время контакта дезинфицирующих средств с микроорганизмами. ⁴ Кроме того, этот тест также можно использовать для быстрого определения времени, необходимого для достижения приемлемого логарифмического уменьшения количества микроорганизмов без нарушения поверхности купона. ¹¹

Выполнение теста на разбавление должно регулироваться протоколом, а сотрудники должны быть должным образом обучены. Тест должен проводиться на трех отдельных партиях дезинфицирующего средства, и должно быть как минимум три квалифицированных противомикробных средства, включая спорицид. Этот тест in vitro должен проводиться внутри компании или в квалифицированной контрактной испытательной лаборатории. ¹ Дезинфицирующие средства, используемые для тестирования, должны быть близки к заявленному сроку годности или превышать его. ¹

Согласно Бартнетту и др., В большинстве процедур тестирования с использованием разбавления обычно используется стандартная суспензия микроорганизма в соответствующих разведениях тестируемого дезинфицирующего средства. Испытания проводятся при комнатной температуре. Через выбранные интервалы времени образцы удаляются, и проводится подсчет жизнеспособности после нейтрализации любого дезинфицирующего средства, оставшегося в образце. Остаточное дезинфицирующее средство можно нейтрализовать разбавлением или добавлением определенных агентов, таких как лецитин или полисорбат 80.” ¹¹

Существует множество вариантов теста на разбавление. PDA TR 70 описывает метод тестирования разбавления, который может быть адаптирован. В исследовании должна использоваться панель из шести-десяти микроорганизмов, включая бактерии, дрожжи, плесень и изоляты окружающей среды — или их штамм Американской коллекции культур тканей (АТСС), если изоляты из окружающей среды недоступны. ¹

Эффективность нейтрализаторов и их способность восстанавливать инокулированные микроорганизмы из материала должны быть продемонстрированы во время испытания на разбавление. ⁴ Нейтрализаторы, инактивирующие дезинфицирующие средства, должны быть включены либо в разбавитель, либо в микробиологические среды, используемые для подсчета микробов, либо в оба. ⁴ USP <1227> Подтверждение извлечения микробов из фармакопейных статей содержит полезную информацию о нейтрализаторах. ¹²

После выполнения теста данные должны быть проанализированы и обобщены в отчете, связанном с выполнением протокола тестирования использования-разбавления. Отчет, протокол, данные и документация по обучению сотрудников должны быть собраны, организованы и сохранены вместе с основным протоколом DET.

В части 2 этой статьи будут обсуждаться компоненты с 3 по 5 — тесты на заражение поверхности, тесты статистического сравнения и сводный отчет по тестированию эффективности дезинфицирующих средств.

Список литературы

1. PDA Технический отчет № 70 — Основы программ очистки и дезинфекции для асептических производственных помещений , Ассоциация парентеральных препаратов, Bethesda, MD (2015).
2. PDA Technical Report No. 13 — Основы программы мониторинга окружающей среды, Ассоциация парентеральных препаратов, Bethesda, MD (2014).
3. ISO 14644-1: 1999 (E) Чистые помещения и связанные с ними контролируемые среды — Часть 1: Классификация чистоты воздуха, Международная организация по стандартизации (1999).
4. Фармакопея США (USP) <1072> Дезинфицирующие и антисептические средства.
5. Свод федеральных правил (CFR), раздел 21: Food and Drugs, по состоянию на 3 ноября 2016 г., по адресу https://www.accessdata.fda.gov/scripts/cdrh/cfdocs/cfcfr/CFRSearch.cfm
6. Руководство FDA для промышленности: стерильные лекарственные препараты, произведенные с помощью асептической обработки — действующая надлежащая производственная практика, Управление по санитарному надзору за качеством пищевых продуктов и медикаментов, Роквилл, Мэриленд (2004).
7. EudraLex, Правила, регулирующие лекарственные препараты в Европейском союзе: Том 4 — Руководство ЕС по надлежащей производственной практике (GMP) для лекарственных препаратов для человека и ветеринарии, Приложение 1 — Производство стерильных лекарственных препаратов, Европейская комиссия (2008).
8. EudraLex, Правила, регулирующие использование лекарственных средств в Европейском союзе — Руководство ЕС по надлежащей производственной практике (GMP) для лекарственных средств для человека и ветеринарии, Часть I, Глава 3: Помещения и оборудование, Европейская комиссия (2014).
9. EudraLex, Правила, регулирующие использование лекарственных средств в Европейском союзе — Руководство ЕС по надлежащей производственной практике (GMP) для лекарственных препаратов для человека и ветеринарии, Часть I, Глава 5: Производство, Европейская комиссия (2014).
10. Сартен, Э., Азбука валидации дезинфицирующих средств, Чистые помещения, март 2005 г.
11. Бартнетт, С. и др., Стратегии контроля грибкового заражения в чистых помещениях, Контролируемая среда, сентябрь 2007 г.
12. Фармакопея США (USP) <1227> Подтверждение выделения микробов из фармакопейных статей

Об авторе:

Кристал М. Бут, магистр медицины, является независимым консультантом по фармацевтической микробиологии в компании Pharmaceutical Advisors, LLC. Она имеет более чем 17-летний опыт работы в фармацевтической микробиологии, работая как в научно-исследовательских лабораториях, так и в лабораториях контроля качества, в том числе в начинающей компании.

За время своей карьеры Кристал разработала и проверила методы для антибиотиков, ушных продуктов, кремов для местного применения, мазей для местного применения, твердых пероральных препаратов, жидких пероральных препаратов, ветеринарных препаратов, парентеральных препаратов для человека, вакцин, биопрепаратов, продуктов с асептическим наполнением и конечной стерилизации. продукты.Эти методы включают тестирование пределов микробов, тестирование бактериальных эндотоксинов, тестирование твердых частиц, тестирование стерильности, валидацию фармацевтических систем водоснабжения, программы мониторинга окружающей среды, валидацию восстановления поверхности, исследования эффективности дезинфицирующих средств, тестирование минимальной ингибирующей концентрации, тестирование эффективности противомикробных препаратов, исследования времени выдержки и различное оборудование проверки. У нее есть опыт работы с глобальными рынками и регулирующими органами.

Кристал — технический автор и оратор в области микробиологии, она также ведет квалификационные классы по асептическому ношению одежды.Она получила степень бакалавра биологии в Университете Олд-Доминион и степень магистра микробиологии в Университете штата Северная Каролина.

Пена или распыление сельскохозяйственных химикатов для очистки и дезинфекции клеток-несушек

РЕЗЮМЕ

В птицеводстве необходимы быстрые и эффективные средства для очистки и дезинфекции помещений. Мы предположили, что коммерчески доступные пенящиеся дезинфицирующие и чистящие средства, применяемые через систему подачи пены со сжатым воздухом (CAFS), могут быть использованы для значительного уменьшения количества аэробных бактерий в коммерческом комплексе клеточного слоя.Было проведено шесть полевых испытаний для оценки текущих промышленных протоколов очистки и дезинфекции и предлагаемого приложения CAFS. Коммерчески доступный хлорированный щелочной пенящийся очиститель (CHL / ALK) был применен CAFS в испытаниях 1 и 2 к одной половине дома, а другая половина дома не обрабатывалась. Затем весь дом был промыт водой под высоким давлением (HPWR). Коммерчески доступная пероксиуксусная кислота (PAA) в испытаниях 3 и 4 или дезинфицирующее средство, смешанное с 14% глутаральдегидом (HI GLUT) / 2,5% четвертичным аммиаком (QAC) в испытаниях 5 и 6, применялась CAFS в половине вымытого птичника.Затем оставшуюся часть птичника обрабатывали смесью 7% глутарового альдегида (LO GLUT) / 26% ЧАС, которую интегратор распылял на клетки. Мазки из окружающей среды чашек поилок и дна клеток собирали до и после обработки, чтобы определить, уменьшились ли аэробные бактерии. Обработка HPWR и CHL / ALK не способствовала последовательному уменьшению количества бактерий на обработанных поверхностях. Существенные различия наблюдались при каждом применении CAFS продукта PAA, что привело к снижению количества бактерий на 1.От 83 до 2,27 log ₁₀ КОЕ / образец. Несмотря на несогласованность, различия ( P <0,05) наблюдались при нанесении распылением 0,4% (об. / Об.) LO GLUT / QAC с бактериальным снижением от 0,42 до 2,15 log ₁₀ КОЕ / образец на обеих поверхностях. Применение CAFS 1,6% (об. / Об.) HI GLUT / QAC привело к снижению количества бактерий ( P <0,05) от 3,11 до 3,78 log ₁₀ КОЕ / образец. Эти данные предполагают, что применение 3,0% (об. / Об.) PAA или 1,6% (об. / Об.) HI GLUT / QAC через CAFS можно использовать для последовательного и значительного сокращения аэробных бактерий в коммерческом комплексе слоев.

Ключевые слова

Пенная система сжатого воздуха

очистка и дезинфекция

ответные меры на заболевание, подлежащие регистрации

биозащита

аэробные бактерии

производство яиц

клеток

Рекомендуемые статьи Цитирующие статьи (0)

ry Association Inc. Опубликовано Elsevier Inc.